P. N. Klose-;-v and . Kennedy, Estuarine Perspectives, vol.533, 1980.

S. W. Nixon, :. B. In, L. E. Nelson, and . Cronin-Éd, Estuaries and nutrients, pp.111-138, 1981.

C. S. Hopkinson, Mar. Biol, vol.94, pp.127-142, 1987.

I. A. , Les espaces lagunaires du Languedoc Roussillon : connaissance et aménagement, Institut des aménagementsrégionaux et de l'environnement, Conseil Régional, p.95, 1990.

R. H. Hesslein, Limnol. Oceanogr, vol.21, pp.912-914, 1976.

R. Carignan and L. Oceanogr, , vol.22, pp.667-670, 1984.

G. M. Th, J. G. Van-eck, and . Smith, Sédiment and water interactions, pp.289-301, 1986.

M. Enell, S. Lôfgren, and H. , , vol.170, pp.103-132, 1988.

M. Tréguer and P. Le-corre, Manuel d'analyse des sels nutritifs dans l'eau de mer (utilisation de l'autoanalyseur Technicon IIR), 2nd éd, vol.100, 1975.

A. Lerman, Ann. Rev. Hearth Planet Sci, vol.6, pp.281-303, 1978.

M. D. Krom and R. A. Berner, Limnol. Oceanogr, vol.25, issue.2, pp.327-337, 1980.

K. R. Reddy, P. A. Moore, M. M. Fisher, and D. A. Graetz, International Symposium on the interactionsbetween sédiment and water, pp.6-9, 1990.

M. V. Propp, V. G. Trarasoff, I. I. Cherbadgi, and . Lootzik,

B. C. Tenore and . Coull, , pp.265-284, 1980.

P. Hall and P. D. Thesis, , vol.138, 1984.

G. Boucher and R. Boucher-rodoni, Mar. Ecol. Prog. Ser, vol.44, pp.229-238, 1988.

C. Grenz, M. R. Plante-cuny, R. Plante, E. Alliot, D. Baudinet et al., , vol.14, pp.195-201, 1991.

E. O. Hartwig, Estuarine Processes, M. WILEY éd, pp.103-117, 1976.

G. Billen, Études écologiques des transformations de l'azote dans les sédiments marins

U. Sci and . De-bruxelles, , vol.266, 1977.

B. Zeitzschel, :. K. In, B. C. Tenore, and . Éd, Marine benthic dynamics, pp.195-218, 1980.

T. R. Fisher, P. R. Carlson, and R. T. Barber, Est. Coast, Shelf Sci, vol.14, pp.101-116, 1982.

S. W. Nllson, M. E. Pllson-;-e, D. G. Carpenter, and . Capone, Nitrogen in the marine environment, pp.565-648, 1983.

E. H. Paasche-;-t, J. Blackburn, and . Sorensen, Nitrogen çycling in coastal marine environment, SCOPE, vol.33, pp.34-57, 1988.

M. Elderfield, N. N. Luedtke, R. J. Mccaffreyet, and M. Bender, Anu J. Sci, vol.288, pp.768-787, 1981.

J. L. Esteves, Réduction du nitrate dans les sédiments marins, Thèse 3e cycle, vol.107, 1984.

B. L. Nowicki and S. W. Nixon, Mar. Ecol. Prog. Ser, vol.22, pp.21-30, 1985.

P. Manning and C. Mineralogist, , vol.27, pp.247-255, 1989.

R. Carbiener and . Bulletin-d'écologie, , vol.14, pp.249-277, 1983.

A. Schnitzler, T. Doctorat-Ès-sciences, and U. L. , , vol.494, 1988.

J. Garbaye, Ann. Sci. Forest, vol.4, pp.451-463, 1972.

E. Klimo and F. Ecosystenu, , pp.425-459, 1985.

H. Mettauer and I. N. Communication-interne, , 1975.

R. Carbiener, M. Trémolières, A. Ortscheit, J. P. Klein;-deutsch, ;. H. Kobus et al., , pp.171-200, 1988.

J. M. Sanchez-perez, M. Trémolières, R. Carbiener, C. R. Acad, and . Sci, , pp.395-402, 1991.

M. Bonneau and R. F. , XL n°= sp, pp.19-27, 1988.

A. G. Price, R. J. Watters, and J. Hydrol, , vol.109, pp.185-197, 1989.

M. D. Jones, D. M. Durral, and P. B. Tinker, New Phytol, vol.115, pp.259-267, 1990.

D. H. Jennings, , pp.223-245, 1990.

C. Espiau, M. Calleja, and J. Auzac, Compte rendu de la réunion I

M. Trémolières, R. Carbiener, A. Exinger, J. C. Turlot, and A. Oecologica, OEcol Planlarum, vol.9, issue.2, pp.187-209, 1988.

C. R. Acad and . Sci, , pp.253-258, 1991.

M. Fontaine and Y. Fontaine, J. Physiol, vol.48, pp.881-892, 1956.

U. K. Laemmli, Nature, vol.227, p.680, 1970.

A. Henschen, :. B. In, J. Wittman-liebold, V. À. Salnikow, and . Erdmann, AdvancedMethods in Protein Microsequence Analysis, pp.244-255, 1986.

M. Kishida, T. Hirano, J. Kubota, S. Hasegawa, H. Kawauchi et al., Gen. Comp. Endocrinol, vol.65, pp.478-488, 1987.

B. Querat, M. Jutisz, Y. Fontaine, and R. Counis, Mol. Cell. Endocrinol, vol.71, pp.253-259, 1990.

J. G. Pierce and T. F. Parson, Annu. Rev. Biochenu, vol.50, pp.465-495, 1981.

B. Querat, M. Moumni, M. Jutisz, Y. Fontaine, and R. Counis, J. Mol. Endocrinol, vol.4, pp.257-264, 1990.

J. M. and C. S. Et-y.-a, Laboratoire de Physiologie générale et comparée du Muséum national d'Histoire naturelle

, Paris Cedex, p.5

J. H. and J. C. , Laboratoire d'Étude des Protéines, Physiologie et Biochimie

M. J. Kurantz and R. M. Zacharius, Physiol. Plant Pathol, vol.18, pp.67-77, 1981.

M. J. Kurantz and S. F. Osman, Physiol. Plant Pathol, vol.22, pp.363-370, 1983.

I. B. Bryan, W. G. Rathmell, and J. Friend, Physiol. Plant Pathol, vol.26, pp.331-341, 1985.

R. M. Bostock, A. J. Kuc, and R. A. Laine, Science, vol.212, pp.167-69, 1981.

C. B. Bloch, P. J. De-wit-ei, and A. J. Kuc, Physiol. Plant Pathol, vol.25, pp.199-208, 1984.

D. A. Davis and W. W. Currier, Physiol Mol. Plant Pathol, vol.28, pp.431-441, 1986.

J. R. Creamer and R. M. Bostock, Physiol Mol. Plant Pathol, vol.28, pp.215-225, 1986.

O. Lhomme, M. Bruneteau, C. E. Costello, P. Mas, P. Molot et al., J. Biochem, vol.191, pp.203-209, 1990.

P. Mas and P. Molot, Ann. Phytopathol, vol.6, pp.237-244, 1974.

A. M. Heape, H. Juguelin, F. Boiron, C. Cassagne, and J. Chromatog, , vol.322, pp.391-395, 1985.

V. E. Vaskovsky and E. Y. Kostetsky, J. Lipid Res, vol.9, p.936, 1968.

H. Wagner, L. Morhammer, and P. Wolf, Biochem. Zeitsch, vol.334, pp.175-184, 1961.

O. H. Lowry, N. R. Roberts, N. Y. Leiner, M. L. Wu, and A. R. Farr, J. Biol, pp.1-17, 1965.

G. R. Fennick, J. Eagles, R. Self, and . Biomed, Mass Spectronu, vol.10, pp.382-386, 1983.

V. P. , M. B. , and G. , Laboratoirede Biochimie microbienne

P. M. Et-p.-m.-m.-:-i, Centre de Recherchesagronomiquesd'Avignon, Station de Pathologie végétale, vol.84140

M. J. Beilby and M. R. Blatt, Plant Physiol, vol.82, pp.417-422, 1986.

M. J. Beilby and V. A. Shepherd, Protoplasma, vol.148, pp.150-163, 1989.

V. A. Shepherd and P. B. Goodwin, Plant Cell Environ, 1991.

K. Luby-phelps and D. Taylor, Cell Motility and the Cytoskeleton, vol.10, pp.28-37, 1988.

B. Kacharand, T. S. Reese, and J. , Cell Biol, vol.106, pp.1545-1552, 1988.

M. Kamitsubo, M. Kikuyama, and I. Kaneda, Protoplasma, pp.10-14, 1988.

M. Kamitsubo, Y. Ohashi, and M. Kikuyama, Protoplasma, vol.152, pp.148-155, 1989.

T. Boller and A. Wiemken, Ann. Rev. Plant Physiol, vol.37, pp.137-164, 1986.

B. A. Silverbergand, T. Sawa, /. Exp, and . Bot, , vol.25, pp.230-243, 1974.

K. Takeshige and M. Tazawa, Plant Physiol, vol.89, pp.1049-1052, 1989.

R. Wayne, M. P. Staves, and A. C. Leopold, Protoplasma, vol.155, pp.43-57, 1990.

M. J. , School of BiologicalSciences, A, vol.12, 2006.

V. A. , , 20006.

C. R. Acad and . Sci, , pp.273-279, 1991.

R. Bibliographiques,

G. Wagner, Plant Vacuoles: Their importancein soluté compartmentationin cells and their applications in plant biolechnology, vol.134, pp.7-19, 1987.

J. , H. Chréstin, B. Marin, C. Lioret, and P. Végét, , vol.20, pp.311-331, 1982.

B. Marin, X. Gidrol, and . J. Biochem, , vol.226, pp.85-94, 1985.

B. Marin, M. Marin-lanza, E. Komor, and . J. Biochem, , pp.365-372, 1981.

H. Chréstin, X. Gidrol, B. Marin, J. L. Jacob, J. D'auzac et al., , vol.114, pp.269-277, 1984.

B. Marin, Biochemistry and function of vacuolar adensine-triphosphatase in fungi and plants, vol.259, 1985.

M. Hill, A. Dupaix, P. Volfin, A. Kurkdjian, and B. Arrio, Plant Vacuoles: Their importance in soluté compartmentationin cells and their applications in plant biolechnology, vol.134, pp.127-133, 1987.

M. Hill, A. Dupaix, P. Volfin, A. Kurkdjian, and B. , ARRIO in Methods in Enzymology, vol.148, pp.132-141, 1987.

. D'auzac, Phytochemistry, vol.14, pp.671-675, 1975.

S. Pujarniscle, LIENHARD et I. I. SECEMSKI, Étude biochimique des lutoïdes du latex rfTîevea brasiliensis Miill.-Arg. Différences et analogies avec les lysosomes, Mémoires de l'ORSTOM, vol.48, pp.1121-1123, 1971.

T. Saidha, A. I. Stern, D. Lee, and J. Schiff, Biochem. J, vol.232, pp.357-365, 1985.

M. Hill, A. Dupaix, M. Nhiri, L. Guyen, B. Arrio et al., , vol.230, pp.47-50, 1988.

A. Pradet and P. Raymond, Ann. Rev. Plant Physiol, vol.34, pp.199-224, 1983.

J. Lorquin, T. Doctorat, and S. Biochimie, Biologie moléculaire et cellulaire, Université des Sciences et Techniques du Languedoc, vol.204, 1990.

B. Marin, Plant vacuoles: their importance in soluté compartmentationin cells and their applicationsin plant biolechnology, NATO ASI Séries, série A, vol.134, 1987.

B. Marin, Le Fonctionnement du Transporteur lonoplastique du Citrate du Latex d'Hévéa brasiliensis, vol.144, pp.1-409, 1982.

O. Laboratoire-de-biotechnologie and B. ;p.-n°5045, , pp.34032-34033

I. N. , Nouvelle adresse 1: Laboratoire de Biochimie microbienne, p.38041

G. Cedex, . Références, and . Bibliographiques,

R. Heller, R. Esnault, C. Lance, and P. Végétale, , vol.266, 1990.

J. E. Colwell, Bidirectional spectral réflectance of grass canopies for détermination of above ground standing biomass, vol.693, pp.75-90, 1973.

R. L. Pearson and L. D. Miller, Remote mapping of standing crop biomass for estimation of the productivity of the shortgrass prairie, Zth International Symposium on Remote Sensing of Environment, pp.1357-1381, 1972.

C. J. Tucker, Red and photographie infrared linear combinations for monitoring végétation, Remote Sen. Environ, vol.8, pp.127-150, 1979.

C. M. Girard and M. Benoit, Méthode de cartographie des prairies permanentes : application à la

, Lorraine sur des données SPOT, CR. Acad. Sci, pp.461-464, 1990.

M. Benoit, C. M. Girard, and E. De-vaubernier, Comparaisondu comportement spectral de prairies permanentes en Lorraine avec leur type d'utilisation, Agronomie, vol.8, pp.265-272, 1988.

. Anonyme, Notice d'utilisationdu logiciel cartographie 2D, Argos Informatique, 1988.

C. M. Girard, Caractérisationdes prairies permaentes par leur physionomie saisonnière et leur comportement spectral : application à l'évaluation de la biomasse, Acta OecologicaljOecologiaPlanlarum, vol.8, pp.354-356, 1987.

M. B. , , vol.88501

J. T. , Lycée agricole et forestier, vol.88500

C. M. ,

S. Hak0m0r1, Cancer Res, vol.45, pp.2405-2414, 1985.

D. Rochu, H. Crespeau, A. Fine, P. Gane, P. Rouger et al., Res. Immunol, pp.373-387, 1990.

N. K. Jerne, J. Roland, P. Cazenave, and E. M. , , vol.1, pp.243-247, 1982.

H. Clausen, S. Hakomori, and . Sang, , vol.56, pp.1-20, 1989.

D. Rochu, H. Crespeau, A. Fine, M. Marneux, and J. Fine, Rev. Franc. Transfus. Hémobiol, vol.32, pp.277-290, 1989.

D. Rochu, H. Crespeau, and A. Fine, , vol.118, pp.67-71, 1989.

J. Y. Cesbron, M. Hayaki, M. Joseph, C. Lutsch, C. Grzych et al., , vol.141, pp.279-285, 1988.

L. J. Rubinstein, B. Goldberg, J. Herniaux, K. E. Stein, and C. A. Bona, J. Exp. Med, vol.158, pp.1129-1144, 1983.

M. Budisavljevic, M. Geniteau-legendre, B. Baudouin, F. Pontillon, and P. J. Verroust,

M. Ronco and /. Immunol, , vol.140, pp.3059-3065, 1988.

Y. M. Thanavala, S. E. Brown, C. R. Howard, I. M. Roitt, and M. D. Steward, J. Exp. Med, vol.164, pp.227-236, 1986.

W. L. Cleveland, D. S. Linthicum, and N. R. Éd, , p.199

M. Alizon, S. Wain-hobson, L. Montagnier, and P. Sonigo, Institut national de Transfusion sanguine, 6, rue Alexandre-Cabanel, Cell, vol.46, pp.63-74, 1986.

C. Hebant, .. J. Can, and . Bot, , vol.59, pp.974-985, 1981.

J. , J. Jacob, and H. Chréstin, Physiology of Rubber Tree Latex, vol.470, 1989.

F. Lynen and /. , Rubb. Res. Inst. Malaya, vol.21, pp.389-406, 1969.

A. Kornberg, K. Horizons-in-biochemistry, B. Kasha, and . Pulman, , pp.252-287, 1962.

J. Amir and J. H. Cherry, Plant Physiol, vol.49, pp.893-897, 1972.

J. Jacob, J. Prevot, A. Clement-vidal, and J. D'auzac, Plant Physiol. Biochenu, vol.27, pp.355-364, 1989.

R. R. Walker and R. A. Leight, Planta, vol.153, pp.150-155, 1981.

P. A. Rea and J. Poole, Plant Physiol, vol.11, pp.46-52, 1985.

Y. Wang, R. A. Leight, K. H. Kaestner, and H. Sze, Plant Physiol, vol.81, pp.497-502, 1986.

P. J. White, J. Marshall, and J. A. Smith, Plant Physiol, vol.93, pp.1063-1070, 1990.

A. Chanson, J. Fichman, D. Spear, and L. Taiz, Plant Physiol, vol.79, pp.159-164, 1985.

S. Pujarniscle and P. Vég, , vol.6, pp.27-46, 1968.

J. , Phytochemistry, vol.14, pp.671-675, 1975.

H. H. Taussky and E. Shorr, J. Biol. Chenu, vol.202, pp.675-685, 1953.

K. Gawehn, H. U. Methods-in-enzymology, . Bergmeyer-Éd, and C. Verlag, , pp.2239-2245, 1974.

M. M. Bradford and A. Biochenu, , vol.72, pp.248-254, 1976.

J. Jacob and N. Sontag, Biochimie, vol.56, pp.1315-1322, 1974.

J. Prevot, J. Jacob, J. D'auzac, A. Clément-vidal, L. L'huillier et al.,

. Physiol, J. L. Expl, J. C. Jacob, and . Prévôt, , pp.217-230, 1988.

J. , Phytochemistry, vol.16, pp.1881-1885, 1977.

B. Martin and J. Biochenu, , vol.229, pp.459-467, 1988.

C. Bremberger, H. P. Haschke, and U. Lottge, Planta, vol.179, pp.465-470, 1988.

K. Takeshige and A. Hager, Plant Cell Physiol, vol.29, pp.649-657, 1988.

J. Prevot, J. Jacob, S. Errchidi, A. Vidal, C. R. Acad et al., , pp.405-410, 1987.

L. L'huillier and U. S. Diplôme-d'études-approfondies, , 1988.

X. Gidrol, Thèse Doctorat 3" cycle, 1984.

M. Valdez-forsans, C. R. Acad, and . Sci, , pp.1045-1047, 1983.

M. Valdez-forsans, Pub. Labo. Zool E.N.S, vol.29, 1986.

I. Kassem, M. Lamotte, M. Valdez, C. R. Acad, and . Sci, , pp.405-407, 1988.

M. Ochman, J. S. Jones, and R. K. Selander, Heredity, vol.58, pp.127-138, 1987.

M. Lamotte, Bull. Biol. Fr, pp.1-239

G. S. Oxford, Heredity, vol.30, pp.127-139, 1973.

G. S. Oxford, Biochem. Genetics, vol.8, pp.365-382, 1973.

J. S. Jones, R. K. Selander, G. D. Schnell, and B. J. , , vol.14, pp.359-387, 1980.

M. S. Johnson, Heredity, vol.43, pp.137-141, 1979.

I. Kassem, Bull. Soc. Zool. Fr, vol.113, issue.2, pp.169-174, 1988.

A. Guiller and D. E. , Biol. Agro., Univ. Rennes-I, p.111, 1988.

E. Nevo and Z. Bar, Population Genetics and Ecology, S. KARLIN{et E. NEVO éd, pp.141-168, 1976.

M. Lamotte, J. Genermont, C. C. Int, and J. Éd, , vol.330, pp.295-301, 1983.

J. Genermont and M. Lamotte, Boll Zool, vol.53, pp.215-237, 1986.

R. Bibliographiques,

E. R. Macagno, J. Comp. Neurol, vol.190, pp.283-302, 1980.

C. A. Baptista and E. R. Macagno, J. Neurobiol, vol.19, pp.707-726, 1988.

J. R. Kuhlman, C. Li, and R. L. Calabrese, J. Neurosci, vol.5, pp.2301-2309, 1985.

C. A. Baptista, T. R. Gershon, and E. R. Macagno, Nature, vol.346, pp.855-858, 1990.

B. D. Evans and R. L. Calabrese, Cell Tissue Res, vol.257, pp.187-199, 1989.

M. Salzet, M. Verger-bocquet, C. Wattez, J. Malecha, and C. , Biochem. Physiol

J. P. Proux, C. A. Miller, J. P. Li, R. L. Carney, A. Girardie et al., Biochem. Biophys. Res. Comnu, vol.149, pp.180-186, 1987.

J. Malecha, C. R. Acad, and . Sci, , pp.693-699, 1979.

J. Malecha, Gen. Comp. Endocrinol, vol.49, pp.344-351, 1983.

J. Malecha, M. Verger-bocquet, A. Lepretre, G. Tramu, C. R. Acad et al., , pp.127-130, 1989.

U. R. Laboratoire-d'endocrinologie-des-invertébrés and C. N. , Université des Sciences et Techniques de Lille-Flandres-Artois,59655 Villeneuved'Ascq Cedex, vol.148

B. Bloch, A. Baird, N. Ling, and R. Guillemin, Endocrinology, vol.118, pp.156-162, 1986.

C. Breton, D. Fellmann, C. Bugnon, C. R. Acad, and . Sci, , pp.749-754, 1989.

C. Bugnon, B. Bloch, D. Lenys, and N. , , vol.6, pp.1299-1313, 1981.

C. Bugnon, D. Fellmann, A. Gouget, and J. Cardot, Nature, vol.298, pp.159-161, 1982.

D. Fellmann, C. Bugnon, and G. N. Lavry, Neurosci. Lett, vol.58, pp.91-96, 1985.

D. Fellmann, C. Bugnon, and P. Y. Risold, Neurosci. Lett, vol.74, pp.275-280, 1987.

C. R. Acad and . Sci, Série III, vol.313, pp.319-325, 1991.

I. N. Kervella, B. Hars, Ç. Rognon, A. Y. Hertling, R. Nowak et al., Signoret pour leur aide efficace. Cette recherche est financée par le contrat n" 89G0388 du Ministère de la Recherche et de la Technologie et la subention n°0366/87 de la Division des Affaires scientifiquesde l

, Note remise le 26 juin 1991, acceptée le 13 août 1991, RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUES

P. E. Pedersen, E. M. Blass, and D. Psychobiol, , vol.15, pp.349-356, 1982.

W. P. Smotherman, Behav. Neural Biol, vol.36, pp.61-68, 1982.

N. Kodama, I. Communication, and . Cong, Intern. Soc. Study Behav. Devel, 1987.

W. P. Smotherman, Physiol. Behav, vol.29, pp.769-771, 1982.

G. Stickrod, D. P. Kimble, and W. P. Smotherman, Physiol Behav, vol.28, pp.5-7, 1982.

S. É. Budavari, . Co, and N. J. Rahway, The Merck Index, 1989.

K. J. Dalton, G. S. Dawes, and J. E. Patrick, Am. J. Obsted. Gynecol, vol.127, pp.4114-424, 1977.

R. G. O'brien and M. K. Kaiser, Psychol Bull, vol.97, pp.316-333, 1985.

Y. Donchin, D. Caton, and S. W. Porges, Am. J. Obstet. Gynecol, vol.148, pp.1130-1135, 1984.

B. L. Langille, R. D. Brownlee, and S. L. Adamson, Am. J. Physiol, vol.259, pp.1247-1253, 1990.

D. P. Groggard, M. T. Lindstrom, F. Stahlman, H. Marchai, and . Sundell, J. Dev. Physiol, vol.4, pp.352-370, 1982.

W. P. Smotherman and S. R. Robinson, Physiol. Behav, vol.47, pp.863-868, 1990.

G. G. Nvs and R. F. Rekker, Eut: J. Med. Chenu, vol.9, pp.361-375, 1974.

D. E. Hornung, S. L. Yougentob, and M. M. Mozeix, Brain Res, vol.413, pp.147-154, 1987.

W. S. Cain and C. L. Murphy, Nature, vol.284, pp.255-257, 1980.

M. A. Vince and T. M. Ward, Behaviour, vol.89, pp.117-127, 1984.

C. Hirono and T. Mitsui, , pp.135-149, 1981.

M. J. Beilby and V. A. Shepherd, Protoplasma, vol.148, pp.150-163, 1989.

C. R. Acad and . Sci, , pp.327-332, 1991.

M. J. Beilby, V. A. Shepherd, C. R. Acad, and . Sci, , 1990.

M. J. Beilby and B. N. Beilby, J. Membrane Biol, vol.74, pp.229-245, 1983.

M. J. Beilby, J. Exp, and . Bol, , pp.165-182, 1990.

M. J. Beilby, J. Membrane Biol, vol.81, pp.113-125, 1984.

M. Tazawa, M. Kikuyama, and S. Nakagawa, Plant Cell Physiol, vol.16, pp.611-622, 1975.

U. Klshlmoto, Plant Cell Physiol, vol.1, pp.429-439, 1966.

H. Kitasato and J. , Gen. Physiol, vol.52, pp.60-87, 1968.

S. R. Mcculloch, M. J. Beilby, and N. A. Walker, J. Membrane Biol, vol.115, pp.129-143, 1990.

J. R. Smith, Aust. J. Plant Physiol, vol.12, pp.413-434, 1985.

M. J. , School ofBiologicalSciences, vol.12, 2006.

V. A. , Department ofHorticulture, School of Crop Sciences, 2006.

J. Ahee, P. Arthuis, G. Cas, Y. Duval, G. Guenin et al., , vol.36, pp.113-114, 1981.

J. Schwendiman, C. Pannetier, N. Michaux-ferriere, and A. Botany, , vol.62, pp.43-52, 1988.

J. Hanower and C. Pannetier, Proc. 5th Intl. Cong. Plant Tissue & Cell Culture, pp.745-746, 1982.

M. M. Bradford, Analylical Biochemistry, vol.72, pp.248-253, 1976.

U. K. Laemmli, Nature, vol.227, pp.680-685, 1970.

B. R. Oakley, D. R. Kirsh, and N. R. Morris, Analytical Biochemistry, vol.105, pp.361-363, 1980.

I. Besse, J. L. Verdeil, Y. Duval, B. Sotta, R. Maldiney et al., Proc. I4tk Intl. Cong. Plant Growth Substances, 1991.

P. M. , Laboratoire des Ressourcesgénétiques et Améliorationdes Plantes tropicales ORSTOM, p.34032

I. B. Et-j.-l.-v.-;-l, , pp.34032-34033

R. Bibliographiques,

C. Sacchi, Vie et Milieu, vol.9, issue.1, pp.11-52, 1958.

J. Peake and P. Dans, , pp.429-526, 1978.

H. Chevallier, Bull. Mus. natn. Hist. nat, vol.448, pp.425-442, 1977.

L. Madec and D. Univ, Rennes-I, vol.345, 1989.

M. S. Johnson, Heredity, vol.36, pp.105-121, 1976.

J. S. Jones, R. K. Selander, G. Schnell, and B. J. , , vol.14, pp.359-387, 1980.

M. Valdez-forsans, Publ. Lab. Zool. E.N.S, vol.29, 1986.

I. Kassem, Publ. Lab. Zool. E.N.S, vol.33, 1987.

R. K. Selander, M. Ochman, and . Dans-isozymes, Current Topics in Biological and Médical Research, pp.93-123, 1983.

A. Guiller and D. E. Agronomie, Rennes, p.111, 1988.

M. Ochman, J. S. Jones, and R. K. Selander, Heredity, vol.58, issue.1, pp.127-139, 1987.

M. Valdez, I. Kassem, M. Lamotte, and G. , Sèl Evol, vol.20, issue.4, pp.441-460, 1988.

E. Nevo, Z. Bar, and . Dans, Population Genetics and Ecology, pp.159-184, 1976.

E. Nevo and T. , Pop. Biol, vol.13, pp.121-177, 1978.

U. Heine, G. De, H. Thé, J. R. Ishiguro, D. Sommer et al., Natl. Cancer Inst, vol.29, pp.41-61, 1962.

H. Ishiguro, D. Beard, J. R. Sommer, U. Heine, G. De-thé et al., J. Natl. Cancer Inst, vol.29, pp.1-38, 1962.

A. Koufos, M. F. Hansen, B. C. Lampkin, M. L. Workman, N. G. Copeland et al., Nature, vol.309, pp.170-172, 1984.

S. H. Orkin, D. S. Goldman, and S. E. Sallan, Nature, vol.309, pp.172-174, 1984.

A. E. Reeve, P. J. Housiaux, R. J. Gardner, W. E. Chewings, R. M. Grindley et al., Nature, vol.309, pp.174-176, 1984.

E. R. Fearon, B. Vogelstein, and A. P. Feinberg, Nature, vol.309, pp.176-178, 1984.

A. Koufos, P. Grundy, K. Morgan, K. A. Aleck, T. I. Ro et al., Am. J. Hum. Genêt, vol.44, pp.711-719, 1989.

A. J. Ping, A. E. Reeve, D. J. Law, M. R. Young, M. Boehnke et al., Am. J. Hum. Genêt, vol.44, pp.720-723, 1989.

P. Grundy, A. Koufos, K. Morgan, F. P. Li, A. T. Meadows et al., Nature, vol.336, pp.374-376, 1988.

V. Huff, D. A. Compton, L. Chao, L. C. Strong, C. F. et al., Nature, vol.336, pp.377-378, 1988.

K. M. Call, T. Glaser, C. Y. Ito, A. J. Buckxer, J. Pelletier et al., Cell, vol.60, pp.509-520, 1990.

M. Gessler, A. Poustka, W. Cavenee, R. L. Neve, S. H. Orkin et al., Nature, vol.343, pp.774-778, 1990.

A. Suang, C. E. Campbell, L. Bonetta, M. S. Mcandrews-hill, and -. S. Chilton'-macneill,

M. J. Coppes, D. J. Law, A. P. Feinberg, H. Yeger, and B. Williams, Science, vol.250, pp.991-994, 1990.

B. Perbal, J. S. Lipsick, J. R. Svoboda, M. À. Silva, /. Baluda et al., , vol.56, pp.240-244, 1985.

J. Soret, G. Dambrine, and B. Perbal, J. Virol, vol.63, pp.1803-1807, 1989.

V. Maloisel, B. Perbal, and . Met, Mol. Cell. Biol, vol.1, pp.245-247, 1990.

B. Perbal, A Practical Guide to Molecular Cloning, 1988.

A. E. Reeve, M. R. Eccles, R. J. Wilkjns, G. I. Bell, and L. J. Millow, Nature, vol.317, pp.258-260, 1985.

J. Scott, J. Cowell, M. E. Robertson, L. M. Priestley, R. Wadey et al., Nature, pp.260-262

A. Brinkman, C. Groffen, D. J. Kortleve, A. Geurts, À. G. Van-kessel et al., , vol.7, pp.2417-2423, 1988.

C. Binkert, J. Landwehr, J. Mary, J. Schwander, G. Heinrich et al., , vol.8, pp.2497-2502, 1989.

A. L. Albiston and A. C. Herington, Biochem. Biophys. Res. \Comnu, vol.166, pp.892-897, 1990.

W. I. Wood, G. Cachianes, W. J. Henzel, G. A. Winslow, S. A. Spencer et al., Mol. Endocrinology, vol.2, pp.1176-1185, 1988.

J. Zapf, M. Kiefer, J. Merryweather, F. Masiarz, D. Bauer et al., J. Biol. Chenu, vol.265, pp.14892-14898, 1990.

M. Kiefer, F. Mariarz, D. Bauer, J. Zapf, and /. , Biol. Chenu, vol.266, pp.9043-9049, 1991.

Y. L. Lee, R. L. Hintz, P. M. James, P. D. Lee, J. E. Shivley et al., Mol:Endocrinol, vol.2, pp.404-411, 1988.

S. Shimasaki, F. Uchiyama, M. Shimonka, and N. Ling, Mol: Endocrinol, vol.4, 1991.

M. Kiefer, R. Ioh, D. Bauer, and J. Zapf, Biochem. Biophys. lies. Commun, vol.179, pp.219-225, 1991.

C. M. and B. P. , Laboratoire d'Oncologie virale et moléculaire, Institut Curie, Bât. n°110, 91405.

B. P. , Université Pierre-et-Marie-Curie, 4, place Jussieu, vol.75252

H. H. Rees-;-biochemistryand-pharmacology, G. A. Kerkut, and L. I. Gilbert, Comprehensive Insect Physiology, pp.249-293, 1985.

H. H. Rees, In: Ecdysone. From Chemistry to Mode of Action, J. KOOLMAN éd, pp.152-160, 1989.

J. T. Warren and C. Hetru, Invert. Reprod. Devel, vol.18, pp.91-99, 1990.

F. Lachaise, M. F. Meister, C. Hetru, and R. Lafont, Mol. Cell. Endocrinol, vol.45, pp.253-261, 1986.

C. Kappler, F. Goltzene, M. Lagueux, C. Hetru, and J. A. Hoffmann, Int. J. Invert. Reprod. Devel, vol.9, pp.17-34, 1986.

C. Hetru, C. Kappler, J. A. Hoffmann, R. Nearn, L. Bang et al., Mol. Cell. Endocrinol, vol.26, pp.51-80, 1982.

C. Blais and F. Lachaise, Gen. Comp. Endocrinol, vol.82, p.224, 1991.

J. T. Warren, S. Sakurai, D. B. Rountree, L. I. Gilbert, S. Lee et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A, vol.85, pp.958-962, 1988.

S. Kiriishi, D. N. Rountree, S. Sakurai, and L. I. Gilbert, Experientia, vol.46, pp.716-721, 1990.

L. I. Gilbert, In: Ecdysone. From Chemistry to Mode of Action, J. KOOLMAN éd, pp.448-471, 1989.

S. Sakurai, J. T. Warren, and L. I. Gilbert, Arch. Insect Biochem. Physiol, vol.10, pp.179-197, 1989.

J. Girault, C. Blais, P. Beydon, C. Rolando, and R. Lafont, Arch. Insect Biochem. Physiol, vol.10, pp.199-213, 1989.

T. Haag, C. Hetru, Y. Nakatani, B. Luu, L. Pichat et al.,

, Compound Radiopharnu, vol.22, pp.547-557, 1985.

C. R. Acad and . Sci, , pp.359-364, 1991.

R. Lafont, B. Mauchamp, J. L. Pennetier, P. Tarroux, L. De-hys et al., Experientia, vol.31, pp.1241-1242, 1975.

P. Porcheron, M. Morinière, J. Grassi, P. Pradelles, and I. Biochenu, , vol.19, pp.117-122, 1989.

C. Blais, R. Lafont, and &. Hoppe-seyler, Z. Physiol. Chenu, vol.365, pp.809-817, 1984.

J. Roussel, C. Schwab, C. Dolle, C. Kappler, and C. Hetru, 10e Colloque de Physiologiede l'Insecte, 1990.

F. Lachaise, G. Carpentier, G. Sommé, J. Colardeau, and P. Beydon, J. Exp. Zool, vol.252, pp.283-292, 1989.

M. L. Grieneisen, J. T. Warren, S. Sakurai, and L. I. Gilbert, Insect Biochem, vol.21, pp.41-51, 1991.

E. Spaziani, H. H. Rees, W. L. Wang, and R. D. Watson, Mol. Cell. Endocrinol, vol.66, pp.17-25, 1989.

P. Biochimie, C. R. Développement, and -. R. , École normale supérieure, vol.686

C. R. Acad and . Sci, , pp.365-371, 1991.

R. Bibliographiques,

R. K. Ibrahim-;-f, I. K. Constabel, and . Vasil, Cell culture and somatic cell genetics ofplants^4, pp.77-96, 1987.

V. E. Hartmann, P. Racine, J. Garnero, Y. Tollard-d-audiffret, and R. Ha, , vol.3, pp.171-177, 1981.

M. H. Zenk, H. El-shagi, and B. Ulbrich, Naturwissenschaften, vol.64, pp.585-586, 1977.

W. De-eknamkul and B. E. Elus, Plant Cell Rep, vol.4, pp.50-53, 1985.

O. N. Gamborg, R. Miller, and K. Ojima, Exptl. Cell. Res, vol.50, pp.151-158, 1968.

T. Murashige and F. Skoog, Physiol. Plant, vol.15, pp.473-497, 1962.

J. P. Nitsch, C. Nitsch, S. Hamon, C. R. Acad, and . Sci, , vol.266, pp.369-372, 1968.

I. Hippolyte and T. Doctorat, Spécialité Biol. Org. Pop., Université des Sciences et Techniques du Languedoc, vol.227, 1980.

W. De-eknamkul and B. E. Ellis, Plant Cell Rep, vol.4, pp.46-49, 1985.

J. V. Escalant, T. Doctoral, ;. I. Hippolyte, B. Marin, J. C. Baccou et al., Spécialité Biologie et Physiologie végétale, Université des Sciences et Techniques du Languedoc, vol.179, 1987.

S. Takayama, M. Misawa, K. Ko, and T. Misato, Physiol. Plant, vol.41, pp.313-320, 1977.

M. Sakuta, A. Komamine-;-f, I. K. Constabel, and . Vasil, Cell culture and somatic cell genetics ofplants, vol.4, pp.97-114, 1987.

G. Marigo, Y. M. Delorme, U. Luttge, and M. Boudet, Physiol. Vég, vol.21, pp.1135-1144, 1983.

M. Oren-shamir, U. Pick, and M. Avron, Plant. Physiol, vol.93, pp.403-408, 1990.

Z. S. Li and S. Delrot, Plant. Physiol, vol.84, pp.895-899, 1987.

L. Reinhold, A. Seiden, and M. Volokita, Plant. Physiol, vol.75, pp.846-849, 1984.

D. K. Dougall, Plant tissue culture as a source of biochemicals, E. J. STABA éd, pp.21-59, 1980.

W. G. Kurz and F. Constabel, Critical Rev. Biotechnol, vol.2, pp.105-118, 1985.

I. H. and R. J. , Laboratoire de Physiologievégétale appliquée, Université dés Sciences et Techniques du Languedoc

I. H. and B. , Laboratoire de Biolechnolégie,ORSTOM, p.911

B. P. , Montpellier Cedex, p.34032

J. B. , Laboratoire de Physiologievégétale

R. Bibliographiques,

L. A. Withers-;-b, G. J. Grout, and . Morris-Éd, The effects oflow températures on biological Systems, pp.389-409, 1987.

R. Galzy, C. R. Acad, and . Sci, , vol.253, pp.706-708, 1961.

K. G. Skene and M. Barlass, Proc. Australian Plant Breeding Conférence Adélaïde, pp.200-201, 1983.

T. Murashige and F. Skoog, Physiol.plantarum, vol.15, pp.473-497, 1962.

M. Barlass, K. G. Skene, and . Vitis, , vol.17, pp.335-340, 1978.

P. Bass, E. Clog, B. Walter, and A. Hort, , vol.227, pp.485-488, 1988.

A. C. Bernard and G. Mur, Ann. Amêlior. Plantes, vol.29, pp.311-323, 1979.

J. Dereuddre, C. Scottez, Y. Arnaud, M. Duron, C. R. Acad et al., , pp.265-272, 1990.

J. Fabre and J. Dereuddre, Cryo-Letters, vol.11, pp.413-426, 1990.

P. Plessis, Résistance à la déshydratation et à la congélation dans l'azote liquide d'apex enrobés de vigne (Vitis vinifera L. cv Chardonnay), vol.50, 1990.

R. G. Butenko, A. S. Popov, L. A. Volkova, N. D. Chernyak, and A. M. Nosov, Plant. Science Letters, vol.33, pp.285-292, 1984.

J. Dereuddre, J. Fabre, and C. Bassaglia, Plant cell Reports, vol.1, pp.170-173

P. P. , C. L. , and J. D. , Université Paris-VI, vol.12, p.75230

, 4; ter, route des Gardes, 92190 Meudon

P. P. Mummrecherche and B. P. ,

P. Thalouarn, M. Arnaud, S. Renaudin, C. R. Acad, and . Sci, , pp.275-280, 1989.

P. Thalouarn, C. Theodet, S. Renaudin, C. R. Acad, and . Sci, , pp.1-6, 1991.

C. W. De-pamphilis and J. D. Palmer, Nature, vol.348, pp.337-339, 1990.

J. Bousquet, L. Simon, and M. Lalonde, Can. J. For. Res, vol.20, pp.254-257, 1990.

K. Shinozaki, M. Suguira, and G. , , vol.20, pp.91-102, 1982.

G. Zurawski, B. Perrot, W. Bottomley, and P. Whitfeld, Nucl. Acids Res, vol.9, pp.3251-3270, 1981.

L. Mcintosh, C. Poulsen, and L. Bogorad, Nature, vol.288, pp.556-560, 1980.

C. M. Lin, Z. Q. Liu, and S. D. Kung, Plant Mol. Biol, vol.6, pp.81-87, 1986.

M. A. Machado, K. Zetsche, and P. , , pp.91-96, 1990.

J. Gray, Nature, vol.322, pp.501-502, 1986.

J. D. Palmer, Ann. Rev. Genêt, vol.19, pp.325-354, 1985.

P. Ozenda and M. Capdepon, Rev. Gin. Bot, vol.86, pp.235-298, 1979.

C. Laboratoire-de, , vol.2, pp.44072-44075

J. Mestecky and J. R. Mcghee, Ado. Immunol, vol.40, pp.153-245, 1987.

J. C. Perkin, D. N. Tucker, and H. L. Knopf, Am. J. Epidemiol, vol.90, pp.319-326, 1969.

P. L. Ogra, S. S. Ogra, and /. , Immunol, vol.110, pp.1307-1311, 1973.

J. R. Mcghee and S. M. Michalek, Ann. Rev. Microbiol, vol.35, pp.595-638, 1981.

K. C. Bergman and R. H. Waldman, Rev. Infect. Dis, vol.10, pp.939-950, 1988.

C. J. Miller, N. J. Alexander, and S. Sutjipto, J. Virol, vol.63, issue.10, pp.4277-4284, 1989.

D. W. Archibald, C. A. Hébert, D. Sun, and C. O. Tacket, Journal of Acquired Immune Deflciency Syndrome, vol.3, issue.10, pp.954-958, 1990.

L. Thibodeau, P. Naud, and A. Boudreau, Genetic variation among Influenza viruses, D. P. NAYAK éd, pp.587-600, 1981.

P. Perrin, L. Thibodeau, C. D. Fritsch, and P. Sureau, Ann. Virol (Inst. Pasteur), vol.135, pp.183-199, 1984.

L. Thibodeau, M. Chagnon, L. Flamand, D. Oth, L. Lachapelle et al., , pp.741-747, 1989.

D. Oth, G. P. Mercier, M. L. Perrin, . P. Joffret, L. Sureau et al., Cell. Immunol, vol.108, pp.220-226, 1987.

P. Perrin, M. L. Joffret, D. Oth, P. Leclerc, L. Sureau et al., Vaccine, vol.6, pp.331-338, 1988.

P. Perrin, L. Thibodeau, and P. Sureau, Vaccine, vol.3, pp.325-332, 1985.

M. W. Russel and J. Mestecky, Rev. Infect. Dis, vol.10, pp.440-446, 1988.

J. Hurlimann and M. Lichaa, J. Immunol, vol.116, p.1295, 1976.

J. F. Heremans, M. In-the-antigen, and . Éd, , vol.2, p.365, 1974.

I. Armand-frappier-;-laval and P. Q. Canada,

C. R. Acad and . Sci, , pp.395-400, 1991.

, En ce qui concerne cette deuxième voie de marquage, il est peu probable que l'americium circulant dans l'hémolymphe soit extrait de celle-ci par les cellules des tubules digestifs. En effet, dans cette hypothèse, on devrait observer par histo-autoradiographiede nombreuses traces alpha entre les tubules digestifs, c'est-à-dire à l'endroit où se trouvent les amoebocytes circulants dont le pouvoir complexant vis-jà-vis de nombreuses substances est bien connu. La figure montre bien que ce n'est pas lé cas. L'americium contenu dans les cellules digestives provient donc bien de la voie digestive, la gonade et les muscles des coquilles (tableau) indique un transfert de cet élément par l'hémolymphe. L'americium circulant dans l'hémolymphe peut provenir de la glande digestive ou d'une pénétration à travers les épithéliums branchiaux ou tégumentaires

, Note remise le 2 juillet 1991, acceptée le 16 septembre 1991, RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUES

R. J. Pentreath, Impacts of radionuclidereleases into the marine environment, pp.241-272, 1981.

S. W. Fowler, M. Heyraud, and T. M. Beasley, , pp.157-177, 1975.

J. C. Guary and S. W. Fowler, Mar. Sci. Communs, vol.3, pp.211-229, 1977.

J. C. Guary and A. Fraizier, Mar. Biol, vol.41, pp.263-267, 1977.

E. I. Hamilton and R. J. Clifton, Mar. Ecol. Prog. Ser, vol.3, pp.267-277, 1980.

J. C. Guary and S. W. Fowler, Estuar. coast. ShelfSci, vol.12, pp.193-203, 1981.

S. R. Aston and S. W. Fowler, /. environ. Radioact, vol.1, pp.67-79, 1984.

P. Bjerregaard, S. T. Fisher, S. W. Fowler, and M. , Ecol. Prog. Ser, vol.21, pp.99-111, 1985.

P. Miramand and P. Germain, Mar. Ecol. Prog. Ser, vol.22, pp.59-68, 1985.

N. S. Fisher and J. L. Teyssie, Mar. Ecol. Prog. Ser, vol.28, pp.197-207, 1986.

P. Miramand, P. Germain, and J. C. Arzur, J. environ. Radioact, vol.5, pp.209-218, 1987.

P. Miramand and J. C. Guary, Mar. Ecol. Prog. Ser, vol.4, pp.127-129, 1981.

P. Miramand, P. Germain, and J. P. Trilles, Mar. Ecol. Prog. Ser, vol.52, pp.217-225, 1989.

P. Miramand, P. Germain, and H. Camus, Mar. Ecol. Prog. Ser, vol.1, pp.59-67, 1982.

M. C. Grillo, J. C. Guary, and S. W. Fowler, Impacts of radionuclide releases into the marine environment, pp.273-291, 1981.

J. C. Guary, Recherches sur les transferts el la fixation du plutonium, de l'americium et du neptunium dans le milieu marin, Thèse Doct. es Sciences Naturelles, 1980.

J. C. Guary and S. W. Fowler, Mar. Ecol. Prog. Ser, vol.1, pp.327-335, 1982.

P. M. , Institut national des Techniques de la Mer, Conservatoirenational des Arts et Métiers, B.P, vol.324, p.50103

P. G. , , p.50105

E. B. and -. , , 14032.

C. M. , J. Whittembury, and I. Environmentalphysiologyofanimais, , pp.289-308, 1976.

D. J. Futuyma and E. , Sinauer associâtes inc, pp.1-565, 1979.

C. R. , , pp.2-313, 1991.

E. -. Série, , p.32

C. R. Acad and . Sci, , pp.401-406, 1991.

O. M. Dunin-borkowski, Universidad Peruana Cayetano Heredia, Gallina Araucana Prehispânica: ! Mito o Realidad?, Thesis (Magister), pp.1-97, 1986.

A. H. Sillau, S. Cueva, P. Morales, and P. Ardu, , vol.386, pp.269-275, 1980.

R. M. Winslow, J. M. Morrissey, R. L. Berger, P. D. Smith, and C. C. Gibson, J. Appl Physiol, vol.45, pp.289-297, 1978.

F. G. Hall, J. Biol Chenu, vol.115, pp.485-490, 1936.

P. L. Lutz and A. Zool, , vol.20, pp.187-198, 1980.

J. P. Holle, M. Meyer, and P. Scheid, Respir. Physiol, vol.29, pp.355-361, 1977.

C. P. Black and S. M. Tenney, Respir. Physiol, vol.39, pp.217-239, 1980.

D. C. Espinoza, La afinidad de la hemoglobina por el oxïgeno en la gallareta (Fulica americana peruviana) y su implicania eco-fisiolôgica. Thesis (Bachiller), pp.1-46, 1988.

I. Hiebl, D. Schneeganssand, G. Braunitzer, . C. Biol, and . Hoppe-seyler, , vol.367, pp.591-599, 1966.

I. Hiebl, R. E. Weber, D. Schneeganss, and G. Braunitzer, Biol. Chenu Hoppe-Seyler, vol.369, pp.217-232, 1988.

R. E. Weber, I. Hiebl, G. Braunitzer, . C. Biol, and . Hoppe-seyler, , vol.369, pp.233-240, 1988.

G. Braunitzer, I. Hiebl, and N. , , vol.75, pp.280-287, 1988.

H. Chiodi, Acta Physiol. Latinoanu, vol.12, pp.208-209, 1962.

F. G. Hall, D. B. Dill, E. S. Guzman, and . Barron, J. Cell. Comp. Physiol, vol.8, pp.301-313, 1936.

Z. Turez, B. E. Ringnalda, O. Moran, and F. Kreuzer,

, Pflugers Ardu, vol.335, pp.109-115, 1980.

H. Chiodi, Resp. Physiol, vol.11, pp.84-93, 1970.

G. Braunitzer, Velu: Dtsclu Zool. Ges, pp.202-213, 1980.

T. Kleinschmidt, J. Marz, K. D. Jurgens, and G. Braunitzer, Biol. Chem. Hoppe-Seyler, vol.367, pp.153-160, 1986.

G. G. Simpson, Splendid Isolation: The Curious History of South American Mammals, pp.1-266, 1980.

R. Hoffstetter, R. Lavocat, C. R. Acad, and . Sci, , pp.172-175, 1970.

L. G. Marshall, The Great American Biotic Interchange, pp.49-85, 1985.

C. L. Gazin, Smiths. mise. Colis, vol.153, issue.4, pp.1-90, 1955.

D. Webb and . Bull, Los Angeles County Mus. Sci, vol.1, pp.1-54, 1965.

D. Webb, Pleistocene Mammals of Florida, pp.170-213, 1976.

J. Morales, D. Soria, and E. Aguirre, Estudios geol, vol.36, pp.139-142, 1980.

H. Lhote, C. El-dromadaire-en-afrique-du-nord, and . Au-sahara, Recherches sur leurs origines, Office national des Approvisionnements et des Services agricoles (ONAPSA)i, pp.1-161, 1987.

C. Monge-c and . Lnterciencia, , vol.14, p.7, 1989.

F. L. , D. E. , and C. M. , Departamento de ciencias fisiologicas, Apartado, vol.5045

C. N. Cm.:-u.r.a.-n°12, Institut français d'Études, andines, Cas n°18-1217, vol.18

J. Prepin, A. Jost, C. R. Acad, and . Sci, , pp.81-85, 1991.

J. G. Bearn, Anat. Rec, vol.136, pp.309-310, 1960.

J. G. Bearn, Endocrinology, vol.80, pp.979-982, 1967.

A. Jost, L. Picon-;-r, R. Levine, and . Luft, Advances in Metabolic Disorders, pp.123-184, 1970.

J. Prepin, C. Gibello-kervran, G. Charpentier, A. Jost, /. Reprod et al., , vol.73, pp.579-583, 1985.

J. Prepin, G. Charpentier, A. Jost, and C. R. Acad, , vol.300, pp.43-47, 1985.

M. Dardenne and J. F. Bach, Biological Activity of Thymic Hormones, Van BERKKUM éd., Kooyer Scientific publ, pp.235-243, 1975.

J. Timsitt, B. Safieh, M. C. Gagnerault, W. Savino, J. Lubetzki et al., , pp.7-13, 1990.

G. Goldstein, Immune Régulation by Characterized Polypeptides, pp.51-59

A. Cohen, Horm. Metab. Res, vol.66, p.66, 1973.

J. P. Dupouy, H. Coffigny, S. Magre, and J. Endoci, , vol.65, pp.347-352, 1975.

H. M. Beaumont and A. M. Mandl, Proc. R. Soc.B, vol.155, pp.557-579, 1962.

C. H. Kemper and P. W. Peters, Teratology, vol.36, pp.117-124, 1987.

F. Collège-de, Laboratoire de Physiologiedu Développement, vol.11

T. Szabo, S. Libouban, and J. Denizot, Arch. Ital Biol, vol.128, pp.229-247, 1990.

R. P. Fink and L. Heimer, Brain Res, vol.4, pp.369-374, 1967.

C. C. Bell, T. E. Finger, C. J. Russel, and E. , Brain Res, vol.42, pp.9-22, 1981.

T. Szabo, S. Libouban, and N. Abstr, , vol.13, p.132, 1987.

O. Oscarsson and I. Hdb, Sensory Physiol, IL, pp.339-380, 1987.

L. Maler, /. Comp, and . Neurol, , pp.67-84, 1973.

S. Libouban and T. Szabo, Neurosci. Lett, vol.6, pp.115-119, 1977.

J. Meek, R. Nieuwenhuys, and D. Elsevier, J. comp. Neurol, vol.245, pp.319-341, 1986.

M. H. Faverger, La proprioception chez un Téléostéen (Mormyridae) avec une Note sur les effets neurophysiologiques d'un anesthésique (MS222), p.111, 1981.

C. B. Srivastava, Arch. Anat. Microsc. Morphol exp, vol.66, pp.253-261, 1978.

C. B. Srivastava, Nat. Acad. Sci. Letters, vol.2, pp.199-202, 1979.

J. Serrier, A. Kleiser, K. Grant, and N. Abstr, Département de Neurophysiologie sensorielle, Laboratoire de Physiologie nerveuse, 1991.

C. R. Acad and . Sci, Série JH, vol.313, pp.421-426, 1991.

G. Lallement, P. Carpentier, I. Pernot-marino, D. Baubichon, A. Collet et al., Neurotoxicology, vol.4, 1991.

G. Lallement, P. Carpentier, A. Collet, I. Pernot-marino, D. Baubichon et al.,

G. C. Ormandy, R. S. Jope, and O. C. Sead, Exp. Neurol, vol.106, pp.172-180, 1989.

D. J. Braitman and S. Sparenborg, Brain Res. Bull, vol.23, pp.145-148, 1989.

J. H. Mcdonough, C. G. Mcleod, and M. T. Nipwoda, Brain Research, vol.435, pp.123-137, 1987.

S. P. Grossman, Science, vol.143, pp.409-411, 1963.

J. W. Olney, T. Degubareff, and J. Labruyère, Nature, vol.301, pp.520-522, 1983.

C. R. Acad and . Sci, , vol.313, pp.421-426, 1991.

C. G. Wasterlain, A. M. Morin, V. Jonec, and B. Research, , pp.341-346, 1982.

W. K. Schwerdtfeger-in, F. Beck, and W. Hild, Structure àndfiber connections of the hippocampus, 1984.

G. Lemercier, P. Carpentier, H. Sentenac-roumanou, and P. Morelis, Acta Neuropathol, pp.123-129, 1983.

C. G. Mcleod, A. W. Singer, D. G. Harrington, and N. , , vol.5, pp.53-58, 1984.

L. Churchill, T. L. Pazdernik, J. Jackson, S. R. Nelson, F. E. Samson et al.,

G. Mcleod, Neurotoxicology, vol.6, pp.81-90, 1985.

J. A. Kemp, A. C. Foster, and E. H. Wong, Trends Neurosci, vol.10, pp.29-298, 1987.

W. F. Maragos, J. B. Penney, and A. B. Young, J. Neurosci, vol.8, pp.493-501, 1988.

G. Paxinos and C. Watson, , 1982.

T. A. Durkin and J. Chromato, , vol.428, pp.9-15, 1988.

G. L. Collingridge and T. V. Bliss, Trends Neurosci, vol.10, pp.288-293, 1987.

C. R. , Unité de Neurotoxicologie, La Tronche Cedex. RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUES, vol.24, p.38702

L. J. Rogers, Lateralization in the avian brain, pp.1-12, 1980.

R. L. Collins, When left handed mice live in right handed worlds, Science, vol.187, pp.181-184, 1975.

P. Signore, M. Nosten-bertrand, M. Chaoui, P. L. Roubertoux, C. Marchaland et al., An assessment of handedness in mice, Physiologyand Behavior, vol.49, pp.701-704, 1991.

J. M. Warren, J. M. Abplanalp, and H. B. Warren, The development of handedness in cats and rhésus monkeys, Early Behavior: Comparative and DevelopmenlalApproaches, pp.73-101, 1967.

J. M. Warren-;-s, R. W. Harnad, L. Doty, J. Golstein, G. Jaynes et al., Handedness and cérébral dominance in monkeys, Lateralization in the nervous system, pp.151-172, 1977.

J. M. Warren, Handedness and laterality in humans and other animais, vol.8, pp.351-359, 1980.

C. R. Acad and . Sci, , pp.427-433, 1991.

P. F. Macneilage, M. G. Studdert-kennedy, and B. Lindblom, Primate handedness reconsidered, Behavioraland Brain Sciences, vol.10, pp.247-303, 1987.

J. Fagot and J. Vauclair, Handedness and bimanual coordinationin the Lowland Gorilla, Brain Behavior and Evolution, vol.32, pp.89-95, 1988.

J. Fagot and J. Vauclair, Handedness and manual specialization in the baboons, Neuropsychologia, vol.26, pp.795-804, 1988.

V. L. Bianxi, Hemispheric specialization of the animal brain for information processing principles, International-Journal ofNeuroscience, vol.20, pp.75-90, 1983.

R. J. Andrew, The development of visual lateralization in the domestic chick, Behavioural Brain Research, vol.29, pp.201-209, 1988.

J. Cole, Paw préférence in cats related to hand préférence in animais and man, Journal of Comparative and PhysiologicalPsychology, vol.48, pp.137-140, 1955.

E. Forward, J. M. Warren, and K. Hara, The effects of unilatéral lésions in sensorimotor cortex on manipulationby cats, Journal of Comparativeand PhysiologicalPsychology, vol.55, pp.1130-1135, 1962.

C. E. Olmstead and J. R. Villablanca, Effects of caudate nuclei or frontal cortical ablation in cats and kittens: Paw usage, Expérimental Neurology, vol.63, pp.559-572, 1979.

W. J. Burgess and J. R. Villablanca, Recovery of function after neonatal or adult hemispherectomy in cats. II Limb bias and development, paw usage, locomotion, and rehabilitàtive effects ofexercices, Behavioural Brain Research, vol.20, pp.1-8, 1986.

U. Tan, M. Yaprak, and N. Kutlu, Paw préférence in cats: Distributionand sex différences, International Journal ofNeuroscience, vol.50, pp.195-208, 1990.

M. Fabre-thorpe, A. Viévard, C. André, J. Fuzellier, and B. Pi, Visually guided movements in the cat: a test using a randomly moving target, vol.11, pp.11-19, 1984.

J. E. Ledoux, D. H. Wilson, and M. S. Gazzaniga, Manipulo-spatial aspect of cérébral lateralization: Clues to the origins of lateralization, Neuropsychologia, vol.15, pp.743-749, 1977.

Y. Guiard, G. Diaz, and D. Beaubaton, Left hand advantagé in right handers for spatial constant error: Preliminary évidencein a unimamial ballistic aimed movement, Neuropsychologia, vol.21, pp.111-115, 1983.

M. F. and -. , Institut des Neurosciences, vol.9

J. F. and J. V. , Laboratoire de Neurosciences fonctionnelles, Unité de Neurosciences cognitives, vol.31

E. De and L. A. Planche,

, / de notre détecteur améliore de façon très substantielle le rapport signal sur bruit (intégral-dû comptage en regard de la zone cardiaque sur intégrale du comptage de l'ensemble ce l'image) par rapport aux caméras à grand champ. Cette méthode permet à la fois l'exploration de la vitalité myocardique et le calcul d, pp.435-440, 1991.

, Note remise le 6 mai 1991, acceptée après révision le 16 septembre 1991, RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUES

F. J. Th, D. S. Wackers, J. Berman, D. D. Maddahi, G. A. Watson et al.,

M. Boucher, B. L. Picard, R. Holman, E. Fridrich, . Inglese et al.,

L. Camin and K. Mckusick, J. Nucl Med, vol.30, pp.301-311, 1989.

P. , D. E. Vernejoul, D. Ducassou, R. Guiraud, J. Robert et al., Atlas pratique de scintigraphiecardiaque, Seheltema et Hoikema bv, pp.4-6, 1977.

G. M. Pohost, N. M. Alpert, J. , S. Ingwall, and H. W. Strauss!-sein, Nucl. Med., X-l, pp.70-90, 1980.

R. D. Okada, D. Glover, T. Gaffney, and S. W. , Circulation, vol.11, pp.491-498, 1988.

W. H. Smith and D. D. Watson, Am. J. Cardiol, vol.66, pp.16-22, 1990.

M. L. Goris, S. H. Daspjt, P. Mclaughlin, and J. P. Kriss, J. Nucl Med., il, pp.744-747, 1916.

D. , D. Watson, N. P. Campbell, E. K. Read, R. et al., J, Nucl. Med, vol.22, pp.577-584, 1981.

C. H. Necker-enfantsmalades, , vol.149

C. R. Acad and . Sci, , pp.441-445, 1991.

. Résultats and . Discussion, Ce déplacementrésulte probablement de l'intégra-tion de la Cide formée durant les premières minutes de l'illumination dans les précurseurs des protéines antennes (pLHCP). La fluorescence variable à 77 K est détectée après 55 mn d'illumination (fig. 2, b), Sur la base des spectres de fluorescence à 77 K, on peut diviser les 16 h d'illumination en trois périodes

P. La-deuxième, de la 4e à la 13e heure du verdissement, est caractérisée par la présence d'une bande de fluorescence unique aux environs jde 685 nm (fig. 1, d) tandis que la fluorescence variable à 293 K se développe progressivement (fig. 3). Celle-ci montre d'emblée les phases « O-I-P » qui traduisent le

, En présence de DCMU, la phase photochimique montre; une forme sigmoïde après 9 h

P. La-3e, de la 14e à la 16e heure du verdissement, se caractérise par l'apparition dans le spectre de fluorescence à 77 K, d'un épaulement à 697 nm et d'une bande d'émission vers 730 nm (fig. 1, e), Ces deux maximums sont caractéristiques du PSn et du PSj des feuilles vertes, vol.10

, Les résultats présentés ici, bien que semi-quantitatifs montrent que l'ontogenèse de l'appareil photosynthétique se déroule, dans les feuilles très jeunes, à la même vitesse ou à une vitesse légèrement supérieure que dans les feuilles étiolées de pois (Thorne et Boardman, 1971) ou de haricot (Franck et coll, 1984.

, ]), although they represent the normal stage at which plants are illuminated in nature. We présent hère the first observations on the assembly of the photosynthetic apparatus in 2-day-old bean seedlings, which are known to contain proplastids in contrast to older, etiolated leaves containing etioplasts [3]. In the material used hère, chloroplast differentiation thus occurs strictly from the proplastid stage. Light reaches the leaves (still hidden between the cotylédons) through the radicelle which protrudes from the 690 nm (bandwidth at half-peak: 28 nm) uMiig a 632, The light-induced greening of angiosperms has been extensively studied in leaves grown in darkness for a long period

. Results and . Discussion, When light is turned on, this Pide is rapidly reduced into Cide [12] showing a fluorescence maximum at 673 nm (Fig. 1, b)

, Note remise le 24 septembre 1990, acceptée après révision le 19 septembre 1991, RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUES

S. W. Thorne and N. K. Boardman, Plant. Physiol, vol.47, pp.252-261, 1971.

N. K. Boardman, J. M. Anderson, and D. J. Goodchild, , pp.35-109, 1978.

J. M. Whatley, New Phytol, vol.78, pp.407-420, 1977.

C. Sironval, M. Brouers, J. Michel, and Y. Kuyper, Photosynthetica, issue.2, pp.268-287, 1968.

B. Schoefs, Mémoire de licence, Laboratory of Photobiology (B22), 1990.

S. Mandoli and W. Briggs, Pour la Science, vol.84, pp.102-111, 1984.

M. Jouy, Photosynthetica, vol.16, pp.123-128, 1982.

N. Murata, Biochem. Biophys. Acta, vol.162, pp.106-126, 1968.

G. Dubertret and P. Joliot, Biochem. Biophys. Acta, vol.357, pp.399-411, 1974.

N. N. Lebedev, I. V. Barskaya, and F. E. Lett, , vol.255, pp.248-252, 1989.

B. Schoefs and F. Franck, Current Research in, pp.755-758, 1990.

N. I. Minkov, C. Sundqvist, and M. Ryberg, Photosynthetica, vol.23, pp.306-313, 1989.

A. P. Thielen and H. J. Van-gorkom, Balaban Int Ser, pp.57-64, 1981.

J. B. Marder and J. Barber, , pp.307-310, 1990.

C. Sironval, F. Franck, R. Gysemberg, B. Bereza, and E. Duiardin, , pp.197-222, 1984.

M. Bertrand, B. Bereza, E. Dujardin, and Z. Naturforsclu, , vol.43, pp.443-448, 1988.

B. S. and F. F. , Laboratoire de Photobiologie(B22)

B. S. ,

C. R. , , pp.2-313, 1951.

, Série IH -35

, U. 161) pour la réalisation des illustrations

, Note remise le 23 septembre 1991, acceptée le 26 septembre 1991, RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUES

R. L. Albin, A. B. Young, and J. B. Penney, Trends in Neurosci, vol.12, pp.366-375, 1989.

G. E. Alexander and M. D. Crutcher, Trends in Neurosci, vol.13, pp.266-271, 1990.

R. R. Delong, Trends in Neurosci, vol.13, pp.281-285, 1990.

H. Bergman, T. Wichmann, and M. R. Delong, Science, pp.1436-1438, 1990.

S. T. Kitai, H. Kjta, M. B. Carpenter, and A. Jaramayan, The basai ganglia H-Structure and function: Current concepts, pp.357-373, 1987.

P. Roblebo and J. Féger, Brain Res, vol.518, pp.47-54, 1990.

J. Féger, P. Robledo, and N. Renwart, , pp.99-108, 1990.

A. Parent, Comparativeneurobiology ofthe basaiganglia, p.452, 1986.

C. R. Acad and . Sci, , vol.313, pp.447-452, 1991.

A. Parent, Trends in Neurosci, vol.13, pp.254-258, 1990.

G. J. Royce and R. J. Mourey, J. Comp. Neurol, vol.235, pp.277-300, 1985.

T. Sugimoto, T. Hattori, N. Mizuno, K. Itoh, and M. Sato, J; Comp. Neurol, vol.214, pp.209-216, 1983.

T. Sugimoto and T. Hattori, Brain Res, vol.264, pp.335-339, 1983.

H. W. Berendse, H. J. Groenewegen, I. G. Bernardi, B. Carpenter, G. Di et al., The Basai Ganglia III, Structure andfunction, pp.89-98, 1991.

M. Bentivoglio, A. Macchiand, and . Alabanese, Neurosci. Lett, vol.26, pp.5-10, 1981.

L. Dubé, A. D. Smith, and J. P. Bolam, J. Comp. Neurol, vol.267, pp.455-471, 1988.

A. F. Sadikot, A. Parent, and C. François, Brain Res, vol.510, pp.161-165, 1990.

S. T. Kitai and J. M. Deniau, Brain Res, vol.214, pp.411-415, 1981.

B. Rouzaire-dubois and E. Scarnati, Neuroscience, vol.15, pp.69-79, 1985.

R. Schwarczz, W. O. Whetsell, and R. M. Mangano, Science, vol.219, pp.316-318, 1983.

C. J. Wilson, H. T. Chang, S. T. Kitai, and E. , Brain Res, vol.51, pp.217-226, 1983.

G. Paxinos and C. Watson, The rat brain in stereotaxic coordinates, p.262, 1986.

K. Semba, P. B. Reiner, and H. C. Fibiger, Neuroscience, vol.38, pp.643-654, 1990.

S. Mraovitch, J. Féger, Y. Calando, J. Seylaz, I. J. Seylaz et al., Neurotransmissionand cerebrovacularfunction, I, pp.397-400, 1989.

P. Laboratoire-de, Faculté des Sciences pharmaceutiques et biologiques, Université Renè-Descartes,4, avenue de l'Observatoire, vol.75006

, Physiologie végétale/Plant Physiology Effets du gel sur la peroxydation des lipides membranaires de racines de Rhododendron

C. R. Acad and . Sci, Série IH, vol.313, pp.453-459, 1991.

, Extracted lipids were assayed according to the method of Bligh and Dyer [5], and the peroxide index was measured according to the method of Koch et al, vol.8

. Malondialdéhyde,

, With acclimated roots the rise in PA was observed at the beginning of the assay; with non-acclimated roots, it occurred between -5 and -10°C. In ail cases, phosphatidylcholine(PC) decreased (Fig. 2B). Furthermore, digalactosyldiacylglycérol (DGDG) levels were always higher after freezing with cold-acclimated roots (Fig. 3), and decreased from 0 to -15°C in acclimated and non-acclimated roots. Linoleic acid (C18:2) and linolenic acid (C18:3) levels in phospholipids and galactolipids (Table) were maintained higher in cold-acclimated roots, After 40 days of cold-hardening, phospholipid and galactolipid levels increased respectively by 49 and 56% (Fig. 1A and 1B), p.4

, The last three authors proposed that phospholipase D activity was dépendent on the degree of Cold acclimation. Our results revealed greater dégradation of phosphatidylcholine (PC) and digalactosjddiacylglycerol (DGDG) in non-acclimated roots (Figs. 2B and 3): During cold acclimation, phospholipid and galactolipid levels in rhododendron roots increased, and 4B), but a slowdown was observed with cold-acclimated roots. Freezing and thawing injuries were accompanied by an accumulation of phosphatidic acid in rhododendron root cells (Fig. 2A), vol.12, pp.453-459, 1991.

, ralentissement de la saturation corrigeant l'action de la phospholipase D. \ En l'absence d'endurcissement, les taux de peroxydes et de MDA sont très élevés aux basses températures, rendant compte d'une intense dégradation des lipides polaires. A l'inverse, après acclimatation, on observe une diminution des peroxydations lipidiques. Pour certains auteurs, en effet, l'acclimatation au froid ralentirait la peroxydation des lipides [4], peut-être, comme le suggèrent Spychalla et Desborough [14] en provoquant une diminution des radicaux libres. Ainsi, lorsque l'acclimatation au froid des racines de rhododendron est réalisée avant le gel

, Ce travail a pu être réalisé grâce à l'ONIFLHOR. Le matériel végétal nous a été généreusement fourni par les pépinières Derly au Thilliers-en-Vexin

, Note remise le 24 juin 1991, acceptée après révision le 19 septembre 1991, RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUES

M. Loubaresse, J. Dereuddre, C. R. Acad, and . Sci, , pp.417-423, 1990.

D. T. Clarkson, K. C. Hall, and J. K. Roberts, Planta, vol.149, pp.464-471, 1980.

A. Sakai, W. Larcher, W. D. Frost-survivalofplants, F. Billings, O. L. Golley et al., , pp.39-58, 1987.

V. K. Zirov and M. N. Merzlyak, Plant Sci. Letlers, vol.30, pp.185-191, 1983.

F. Bligh and W. Dyer, Can. J. Biochem. Physiol, vol.937, pp.911-917, 1959.

M. Lepage and J. Chromatogr, , vol.13, pp.99-103, 1964.

L. Metcalfe, A. Schmitz, A. Pelka, and A. Chenu, , vol.38, pp.514-515, 1966.

R. B. Koch, B. Sterr, and C. C. Ferrau, Arch. Biochem. Biophys, vol.78, pp.165-179, 1958.

R. Heath-el and L. Parker, Ardu Biochem. Biophys, vol.125, pp.189-198, 1968.

I. Horwath, L. Vigh, A. Belea, and T. Farkas, Physiol. Plant, vol.45, pp.57-62, 1979.

P. J. Kuiper, Physiol. Plant, vol.64, pp.118-122, 1985.

E. Slkorska, A. Kacperska, M. Biochemistry, . Of-plant, J. F. Lipids et al., , vol.8, pp.415-418, 1982.

S. Yoshida and A. Sakai, Plant Physiol, vol.53, pp.509-511, 1974.

J. P. Spychalla and S. L. Desborough, Plant Physiol, vol.94, pp.1214-1218, 1990.

M. L. , A. P. , and J. D. , Laboratoire de Physiologiedes Organes végétaux après Récolte

M. L. and J. D. , Laboratoire de Cryobiologie végétale, vol.12

, Hevea montrent souvent, dès 40 jours de culture, un brunissement (nécrose) entravant leur développement embryogène. Le brunissement apparaît en même temps que de fortes activités peroxydases (PO), polyphénoloxydases (PPO) soluble et liée, alors qu'augmente la superoxyde dismutase (SOD) et que la catalase (CAT), Résumé -Les cals tissulaires d'

, De faibles teneurs en hormones en première subculture favorisent le développement du potentiel embryogène mais aussi le brunissement lequel s'oppose finalement au développement des embryons. strong peroxidase (PO) and soluble and bound polyphenoloxidase(PPO) activities, whereas there is an increase in superoxide dismutase (SOD) and the initially considérable catalase (CAT) decreases towards zéro. Separate analysis of pale and necroiic callus revealed greater PO, bound PPO and NADHquinone réductase (NQR) activities, whereas soluble PPO and SOD were distinctly weaker. Tins may indicate opposition between the enzymes producing or taking up toxic forms of oxygen (PO, PPO, NOR) and those which neutralize them (SOD, CAT), L'analyse séparée de cals clairs ou nécrosés montre chez ces derniers des activités PO, PPO liée, NADH-quinoneréductase (NQR) plus importantes alors que PPO soluble et SOD sont sensiblement plus faibles

, Abridged English Version -Somatic embryogenesis is one of the methods of approaching in vitro multiplication of Hevea brasiliensis [1], However, callus from the inner integument of immature fruits frequently displays browning (necrosis) in vitro which leads to tissue degeneration and the stopping of embryogénie development. The work in die literature on browning in vitro is more concerned with control methods

, Explants from integuments of immature Hevea seeds were cultured on MH1 callogenesis

-. , Analytical methods hâve' been described previously, vol.13

, This was related to a considérable increase in peroxidase (PO) and free and bound polyphenoloxidase (PPO) activities, and, to a lesser extent, in superoxide dismutase (SOD) activity. In contrast, there was a spectacular decrease and disappearance of catalase (CAT) activity in the callus. NADH-quinone réductase (NQR) activity, producing toxic oxygen (0_T), remained practically stable (Fig. 1), Progressive browning of callus was observed in the first subculture in in vitro development of the explants

C. R. , , pp.2-313, 1991.

, Série III -36

C. R. Acad and . Sci, Série Ul, vol.313, pp.461-466, 1991.

, A breakdown of PO activités at day 60 goes with a more or less complète degeneration of the tissues. Separate anal}_is of pale and necrotic callus after 46 days of culture showed that PO, bound PPO and NQR activities were greater in necrotic jcallus whereas soluble PPO and SOD were distinctly lower, time SOD and PPO activities decrease at varying rates on day 40

, Observation on day 55 of the différent calli classified ! according to the percentage of browning showed that only 3% were not or only slightly necrotic and were then 100%

, Considération of the biochemical browning mechanism leads to the conclusion that the increase in PO activity and the disappearance of CAT are sufficient to cause browning

, In tiiis case, the Haber-Weiss reaction [17] produces even more toxic forms of oxygen, such as OH' which is particularly aggressive towards the unsaturated fatty acids of membrane phospholipids and hence causes cell decompartmentation, The toxic forms of oxygen (0'2~) produced almost continuously by NQR may be neutralised by SOD (with production of H202) if CAT activity did not dwindle progressively, vol.18

, This fact does not exclude that in other conditions perfectly clear calli are totally devoid of embryogénie potentialities. ; INTRODUCTION. -Étant donnée l'importance économique de YHevea et son mode de propagation par greffage, sa multiplication in vitro a fait l, hormones may harm embryogenesis by enhancing browning, vol.24

, Alors que le phénomène de brunissement a été largement étudié chez les fruits, il n'est que rarement considéré en culture in vitro. Les travaux dans ce domaine concernent plus les moyens de lutte que les mécanismes du phénomène.1 Ainsi, le polyvinylpyrrolidone (PVP) donné comme piège à phénols réduit considérablement le brunissement chez Hamamelis, Plusieurs voies d'approche sont abordées, notamment l'embryogenèse somatique. Les cals issus du tégument interne de fruits immatures sont les plus prometteurs bien qu'ils présentent souvent un phénomène de brunissement qui conduit rapidement à la nécrose des tissus sans que la biochimie du phénomène soit connue

, Le charbon actif qui est un absorbant des composés phénoliques restaure le potentiel embryogène des cals de Quercus petrea et de Fagus sylvaiica, vol.7

C. R. Acad and . Sci, Série Ul, vol.313, pp.461-466, 1991.

C. R. Acad and . Sci, , vol.313, pp.461-466, 1991.

, Alors que la liaison entre activité PPO et brunissement a été maintes fois établies chez les fruits, tels par exemple l'olive [19] et la pomme [20] une originalité du présent travail est la mise en évidence de la disparition progressive d'une activité catalase éminemment protectrice. U apparaît clairement que la mise en culture entraîne un déséquilibre entre les enzymes favorisant le brunissement (PPO, PO, NQR) et celles assurant la détoxification de l'oxygène toxique (SOD et CAT). On sait aujourd'hui qu'une réduction importante du taux d'hormones après l'initiation de la callogenèse est nécessaire pour l, réagir avec 02 par la réaction d'Haber-Weiss [17] pour produirele radical OH' particuliè-rement agressifvis-à-vis des acides gras insaturés constituantdes phospholipides membranaires [18] et contribuerainsi à leur dégradation puis à la décompartimentation cellulaire

, Les résultats présentés ici confirment ces observations mais l'on peut penser que le choc induit à J 20-J 25 par la chute considérable du taux d'hormones introduites dans le milieu n'est pas sans conséquence sur le brunissement des tissus [24] alors que dans d'autres conditions, des cals parfaitement clairs peuvent être totalement dépourvus d'une potentialité embryogène. C'est ainsi qu'ion peut observer chez Quercus petrae et Fagus sylvatica que la diminution du brunissement des cultures d

, Nous remercions la station de Bimbresso de 1T.R.C.A. en Côte d'Ivoire pour l'aimable fourniture de fruits immatures

, Note remise le 6 mai 1991, acceptée après révision le 16 septembre 199L RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUES

M. P. Carron, F. Enjalric, L. Lardet, and A. Deschamps-in, Biolechnology in Agricultureand Forestrv, éd. YPS BAJAJ, vol.5, pp.221-245, 1989.

J. Christiansen and M. Fonnesbech, Acta Horticulturae, vol.54, pp.101-104, 1975.

A. Hohtola, 5th Congress of the Fédération of European Societiês of Plant Physiology (FESPP), p.1316, 1986.

A. Trautmann and J. O. Visser, Plant cell, Tissue and Organ culture, vol.16, pp.39-46, 1989.

J. M. Bonga and D. J. Durzan, Cell and Tissue Culture in Forestry, vol.2, 1987.

J. Jorgensen and /. , Plant Physiol, vol.132, pp.638-640, 1988.

A. Mayer, E. Harel-;, J. Friend, and M. J. Rhodes, Récent advances of the biochemistry '-offruits and vegetables, pp.171-180, 1981.

J. E. Thompson, R. L. Legge, and R. F. Barber, New Phytol, 105,|1987, pp.317-344

M. P. Carron, F. Enjalric, C. R. Acad, and . Sci, , pp.653-658, 1985.

E. Auboiron, M. P. Carron, and N. Michaux-ferriere, Tissue and Organ Culture, vol.21, pp.31-37, 1990.

I. E. Hadrami, N. Michaux-ferriere, M. P. Carron, J. D'auzac, C. R. Acad et al., , pp.205-211, 1989.

B. Chance, A. C. Maehly-;-s, N. O. Collowick, and . Kaplan, Methods in Enzymology, vol.11, pp.764-775, 1955.

C. Beauchamp-c.-et and I. Fridovich, Anal. Biochenu, vol.44, pp.276-287, 1971.

P. S. Hoffman, L. Pine, and S. Bell, Appl. Environ. Microbiol, pp.784-791, 1983.

M. Bradford and A. Biochenu, , vol.72, pp.248-254, 1976.

B. Halliwel and F. E. Letters, , vol.92, pp.321-326, 1978.

J. , C. Sanier, and H. Chréstin, Proc. Int. Rubber Conf, vol.3, pp.102-112, 1985.

V. Sciancalepore and F. Science, , vol.50, pp.1194-1195, 1985.

M. Y. Coseting, C. Y. Lee, and /. F. Sci, , vol.52, pp.985-989, 1987.

R. Linacero and A. M. Vazquez, Plant Science, vol.44, pp.219-222, 1986.

E. G. Meuer, D. C. Brown, and P. , , vol.69, pp.591-596, 1987.

I. E. Hadrami, M. P. Carron, and J. D'auzac, Aimais of Botany, vol.67, pp.511-515, 1991.

A. J. Schmidt, J. M. Lee, G. An, and B. Biolechnology, , vol.33, pp.1437-1444, 1988.

, Sciences et Techniques du Languedoc, pp.34095-34100

C. R. Acad and . Sci, , vol.313, p.467, 1991.

, Biotechnologies/Biotechnologies Régénération de plantes à partir de protoplastes foliaires d'un clone d'orme champêtre (Ulmus campestris Mill

D. Noëlle, D. Pascal, O. Shizuka, P. Christiane, G. Béatrice et al.,

, Résumé -Des protoplastes foliaires d'orme champêtre ont été obtenus (5,5.107/g de m.f.) à partir de feuilles jeunes prélevées sur des plantes microbouturées in vitro depuis 55 jours. A l'obscurité, les divisions sont apparues après 4

, Abstract -Leafprotoplasts of common elm were obtained (5.5 x 107/gfw.) from young unfolded leaves of 55-day-o/d micropropagaledplants

, European and American elms are disappearing. Several drawbacks such as length of the juvénile period, incompatibility phenomena and scarcity of résistant génotypes, complicate improvement of tolérance by hybridization, AbridgedEnglish Version -I. INTRODUCTION. -Because of their susceptibility to Dutch Elm Disease

. Il and . Methods, Cut leaves (1 mm strips) were incubated for 17 hrs. (8 hrs. dark/9 hrs. light) in the growth chamber (21/26°C) in a filter-sterilized enzyme solution. Enzj'mes were added to the previous médium with sucrose (0.03 M) and mannitol (0.6 M). Protoplasts were released by a 10 min. alternative shaking, filtered through 2 sieves (150, 36 um), and collected after 3 centrifugations (55 g, 5 min, One clone of common elm (OcBa) was used. Leaves were excised from plants micropropagated, pp.25-85

. Protoplasts, /ml) were plated in liquid basai médium

, The médium was partially renewed (1/3) each 7-10 days and NAA concentration lowered (0.55 uM), Mannitol was set up to 0.65 M

C. R. Acad and . Sci, Série III, vol.313, pp.467-473, 1991.

, during the next month. Colonies (0.5-1 mm) were plated on agar médium without mannitol. For shoot régénération and/or élongation, colonies (2-3 mm) were subcultured on basai médium containing IBA (0, p.3

. Iii and . Results, 3 enzymes were needed for protoplast isolation: Onozuka RS (0.2%), Driselase (0.1%), Pectolyase Y 23 (0.03%). Released protoplasts had a diameter ranging from 15-25 [Xm (Fig. 1). Yield and initial survival was improved when mannitol was used instead of sucrose or KC1 for the same osmotic pressures, vol.12, p.34

. Mpa, During rinsing procédure, the use of a discontinuous gradient with KC1 at the bottom allowed the séparation of protoplasts from enzyme mixture; then the lowering of médium density by addition of KC1 solution enhanced the final recovery of viable protoplasts: 86% instèad of 40% when centrifugations were performed in the culture médium alone. Divisions were noticed after 4-10 days (Fig. 2), when protoplasts (survival >85%) were experiments. The highest number of colonies (Fig. 3) was obtained when coconut water was added to the médium at 21°C (Table II). Shoots' were observed after 4-12 months (Fig. 4) on calli transferred under light (16 hrs., 21 W.m~2). Régénération frequency was low (2.4 x 10~7 ), and when the youngest expanded leaves were taken from 55-day-old plants (Table I)

, the bénéficiai effect of coconut water [18] and efficiency of partial médium renewal [2]. In contrast, it was observed that mild température has a better influence on elm protoplast jdivisions than high températures generally used (25-28°C) [19]. The results reported hère should be easily adapted to other elm clones, since 8 plants were recently regenerated from one experiment done with the Dutch hybrid "Dodoens". Nevertheless, the process of protoplast culture and plant régéné-ration still hâve to be improved. INTRODUCTION. -Les espèces européennes et américainesdu genre Ulmus sont presque totalement décimées par la Graphiose. La longueur de la période juvénile (environ 10 ans), la rareté de sources de résistance (U. pumila L., U. parvifolia Jacq.) et l'existence de phénomènes d'incompatibilité compliquent l'obtention d'ormes résistants par croisements. Actuellement, seul « Sapporo Gold 2 », hybride sélectionné aux États-Unis [1] présente une tolérance satisfaisante. A condition de maîtriser la régénération de plantes, l'utilisation des protoplastes peut fournir une alternative aux méthodes d'hybridation conventionnelles, noted hère by leaf rank and date of the last subculture, the significance of darkness in the first stages of protoplast development

, pour la première fois, les conditions d'obtention et de culture de protoplastes foliaires d'orme champêtre conduisant à la néoformation de plantes

M. Matériel-et, L'expérimentation a été réalisée sur un clone d'orme champêtre (OcBa) récolté à TArboretum des Barres, et multiplié in vitro par microbouturage de noeuds et d'apex selon la méthode mise au

, Pour la préparation des protoplastes, les feuilles ont été prélevées sur ces plantes, 25 à 85 jours après le repiquage

, Isolement des protoplastes. -Pendant la durée du prélèvement (1 h) les feuilles sont

, de fer ajouté après autoclavage (112°C, 20 mn) sous forme d'un complexe Fe-citrate d'ammonium

, Les feuilles sont ensuite lacérées (bandes de 1 mm) et transférées dans unesolution d'enzymes stérilisée par filtration (0,45 pin). Les enzymes sont introduits dans le milieu précédent complété en saccharose (0,03 M) et en mannitol (0,6 M). Les feuilles sont incubées 17 h (dont 8 h à l'obscurité) dans la chambre de culture (26/22°C). A la fin, une agitation alternative de 10 mn, libère les protoplastes. La suspension diluée (1/3) avec une solution isotonique de KC1 (3,8 %) est passée sur 2 tamis de mailles 150 puis 36 pm. Le filtrat est alors déposé sur la solution de KC1 dans laquelle les protoplastes, séparés des enzymes, migrent pendantla centrifugation (55 g, 5 mn), La plasmolyse est réalisée par le mannitol (0,55 M), le pH est ajusté à 5,5 et stabilisé par 3,5 mM de MES (acide N-morpholino éthane sulfonique)

, Le mannitol a été porté à 0,65 M. Le milieu a été renouvelé par 1/3 tous les 7 à 10 jours. Dès ce moment la quantité d'ANA a été diminuée (5,5 uM). A partir de la 3e semaine, Culture des protoplastes. -Les protoplastes ont été mis en culture, en milieu liquide, à raison de 1,5 à 6.105 protoplastes vivants/ml. Outre les éléments de base déjà décrits

, à 4 mm) ont été disposés sur un milieu favorisant la régénération de l'hybride hollandais Dodoens (résultats non publiés) caractérisé par la présence de glucose (110 mM), d'acide indole butyrique (AIB, 0,05 uM), de BAP (2,3 pM) et d'acide gibbérellique (GA3, 14 pM). Les tigelles (5 mm) ont été isolées sur le milieu de microbouturage [7] pour allongement et enracinement. Les plantes ont été acclimatées à 18/20°C en miniserre pendant 3 semaines

. Méthodes-de-comptage, Le nombre de protoplastes sphériques, considérés comme vivants, a été évalué par comptages à I'hématimètre de Malassez, 2013.

, L'efficacité des traitements a été déterminée, soit par le pourcentage de protoplastes divisés (comptages dans une cellule de 10 mm3), soit par le nombre de colonies supérieures à 5 cellules, présentes dans RÉSULTATS, p.1

, L'efficacité ! de ce mélange dépend de la présence de mannitol (de 1,34 à 1,63 MPa), plutôt que de saccharose ou de KC1. Les feuilles jeunes prélevées sur des plantes repiquées depuis 55 jours (tableau I) sont les plus aptes et libèrent environ 5,5.107 protoplastes/g de m.f. dont le diamètre varie entre 15 et 25 pm (fig. 1). Le rinçage des protoplastes ne peut s'effectuer directement dans le milieu de culture. En effet, pour une accélération de 55 g, 60 % des protoplastes sont perdus au cours des centrifugations, et pour une accélération supérieure la nécrose est totale

, obscurité favorise la survie après I semaine (56 % contre 47 % à la lumière; 16 h, 21 W.m~2) et l'apparition des divisions. II en est de même pour une densité initiale de 3.105 protoplastes/ml (68 % contre 30 % environ pour des inoculum inférieurs ou supérieurs). Dans ces conditions les divisions ont été observées après 4 à 10 jours de culture (fig. 2).; Leur pourcentage, après 5 à 8 semaines, a varié entre 0,4 et 5 %. Les valeurs les plus élevées ont été trouvées dans les milieux

, ) sont apparus après 4 à 12 mois, soit sur le milieu initial, soit sur le milieu de régénération,-après transfert des cultures à la lumière. Dans un premier essai, 11 cals seulement ont présenté des bourgeons, soit une fréquence de régénération faible de 2,4.10~7. L'allongement et l'enracinement ont été obtenus sur un milieu sans

, plantes conformes à partir de protoplastes folaires d'un orme champêtre cultivé in vitro

, alors que les tempéra-tures généralement utilisées se situent entre 25 et 28°C [19], l'effet favorable d'une température de 21°C a été mis en évidence pour OcBa. La méthodologie qui vient d'être décrite devrait pouvoir s'adapter à d'autres ormes, puisque 8 plantes viennent d'être régénérées à partir des protoplastes foliaires de l'hybride Dodoens. Toutefois l'utilisation de ce système pour la réalisation de manipulations génétiques n, Le rendement en protoplastes est un des plus important obtenus pour ces végétaux, il est 3 fois supérieur à celui rapporté pour les peupliers

R. M. Les-auteurs and J. Casenave, Leboeuf et I. Serpette pour leur assistance technique efficace. Note remise le 20 août 91, acceptée le 30 septembre 1991, RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUES

E. B. Smalley, D. T. Lester, and H. , , vol.8, pp.514-515, 1973.

B. H. Mccown and J. A. Russel, Cell and Tissue Culture in Forestry, vol.2, pp.16-30, 1987.

C. Sjôdin and K. Glimelius, Theor. Appl. Genêt, vol.78, pp.513-520, 1989.

R. Gautheret, C. R. Acad, and . Sci, , vol.210, pp.632-634, 1940.

C. Jacquiot, C. R. Acad, and . Sci, , vol.229, pp.529-530, 1949.

M. B. Sticklen, S. C. Domir, and R. D. Lineberger, Plant Science, vol.47, pp.29-34, 1986.

N. Dorion, P. Danthu, and C. Bigot, Ann. Sci. For, vol.44, pp.103-118, 1987.

T. Murashige and F. Skoog, Physiol. Plant, vol.15, pp.473-494, 1962.

R. Heller, Ann. Sci. Nat. Biol. Vég, vol.14, pp.141-143, 1953.

M. C. Chupeau, C. Bellini, P. Guerche, B. Maisonneuve, G. Vastra et al., Biol./Technology, vol.1, pp.503-508, 1989.

G. Morel and R. H. Wetmore, Am. J. Bol, vol.38, pp.141-143, 1951.

C. R. Acad and . Sci, Série III, vol.313, pp.467-473, 1991.

N. Dorion, B. Godin, C. Bigot, and P. , POTRYKUS et coll. éd., 6°International Protoplast Symposium, pp.8-9, 1983.

P. Danthu, Thèse 3e cycle, vol.156, 1986.

S. Ohka and K. Ohyama, J. Plant Physiol, vol.119, pp.455-460, 1985.

A. Wallin and L. Johansson, J. Plant Physiol, vol.135, pp.565-570, 1989.

M. A. Smith and B. H. Mccown, Plant Science Letters, vol.28, pp.149-156, 1982.

S. J. Ochatt and J. B. Power, Plant Science, vol.56, pp.75-79, 1988.

J. A. Russel and B. H. Mccown, Plant Cell Reports, vol.7, pp.59-62, 1988.

Y. Hidano, M. Niizeki, and S. Horliculturae, , vol.37, pp.201-216, 1988.

N. D. , C. P. , and B. G. Et]c, Physiologie végétale appliquée

P. D. ,

S. O. , Lab. of Horticulture, Fukui prefecturalCollège, p.910

E. De and L. A. Planche,

. Matériel and . Méthodes, Les uteri ont été prélevés sur les cobayes albinos femelles de souche Dunkin Hartley provenant de Charles River France. Les glandes endométriales ont été isolées selon la technique décrite par, Chaminadas et coll, issue.5

, Les cellules atteignaient la confluence au bout de 4 jours environ et la présence de récepteurs de la progestérone (RPs) intranucléaires a été évaluée selon la méthode décrite par Perrot, Brièvement, après une ctilture primairedans un milieu Ham's F-12 contenant 5 % de sérum de veau foetal, les cellules ont été mises en subculture sur des boîtes de plastiques recouvertes de Matrigel

C. Modifiée-par,

, Le pourcentage de cellules présentant des noyaux immunomarqués a été déterminé sur une série de quatre subcultures différentes.Le pourcentage de cellules épithéliales a été apprécié par immunomarquage indirect à l'aide d'un anticorps anticytokératine, vol.7

, 41 TBq/mmol, N.E.N., France) en présence des hormones correspondantes et l'incubation a été poursuivie jusqu'à la 23e heure. Les temps d'exposition à la progestérone et d'incubation avec le [35S]-SO|~o nt été établis dans une étude préliminaire pour obtenir une réponse maximale des CEG. Pour mesurer l'incorporationdu [35S]-SOj~d ans les produits de sécrétion, les milieux (1 ml/boîte) ont été centrifugés à 3 500 x g pendant 20 mn el le surnageant a été divisé en fractions de 200 ul, Quand les cellules atteignaient la confluence, elles ont été incubées pendant 23 h dans le MCD contenant E2(10-8 M) seul ou associé à la progestérone à des concentrations variables

, Les macromolécules marquées des lysats cellulaires et des milieux ont été isolées par chromatographie de gel filtration sur une colonne de Sephadex G-25 (fine) (Phannacia, France)

, La radioactivité a été mesurée dans une partie aliquote des lysats cellulaires et dans les fractions de macromolécules cellulaires et sécrétées par comptage en scintillation liquide en utilisant un appareil Tri-Carb modèle 460 C (Packard) et exprimée en impulsions ou coups par minute par microgramme de protéines cellulaires, Triton X100 et 0,03% (v/v) d'azide de sodium

L. Quantité-intracellulaire-de-sulfate-disponible, QISD) a été alors exprimée en soustrayant du, SOj~i ncorporé dans les macromoléculescellulaires. Les différencesstatistiques ont été déterminées en

. Résultats and . Discussion, Après 4 jours de subculture, 50 % des cellules sont immunomarquées poulies RPs (fig. 1). L'immunomarquage est toujours nucléaire sans marquage cytoplasmique et le pourcentage de noyaux marqués ne varie pas quand le temps de traitement avec E2 est prolongé jusqu'à 48 h. Quand la progestérone (10~7 M) est ajoutée dans le milieu contenant E2(10~8 M), après le 4e jour de subculture, une diminution hautement significative du pourcentage de noyaux immunomarqués est observée 24 h après l'addition de progestérone. Après 36 h, plus aucun immunomarquage n'est détectable. C'est pourquoi, l'effet de la progestérone sur les CEG a été étudié durant les premières 23 h de traitement avec cette hormone. Durant cette période il persiste un nombre significatif de cellules exprimant des RPs. Afin d'étudier l'action de la progestérone, Toutes les études ont été conduites sur des cellules confluentes après 4 jours de subculture dans le MCD contenant E2(10~8 M). Dans ces conditions, 90 à 95 % des cellules confluentes montrent une réaction positive après immunomarquage indirect avec l'anticorps anticytokératine

C. R. Acad and . Sci, Série HI, vol.313, pp.475-480, 1991.

, Effet de la progestérone sur le pourcentage de cellules exprimant des récepteurs de la progestérone

, Le pourcentage de cellules exprimant des récepteurs de la progestérone a été calculé à confluence (0 h) et à post-confluence (24, 36, 48 h), La progestérone (10~7 M) a été ajoutée (-©-) ou non (-E-) aux milieux de culture contenant de l'estradiol (10~8 M) à 0 h. Les résultats sont les moyennes ± écart-type des valeurs obtenues à partir de quatre séries de cultures. * P<0,05 vs traitement avec l'estradiol

, Progestérone effect on the percentage of cells exhibiting progestérone receptors in glandular epithelial cells. The percentage of progestérone receptor-immunolabellednuclei pas calculated in confluent (0 lu:) and postconfluent (24, 36, 48 hrs.) subcultures on Matrigel-coaled dishes in hormonally defined médium. Progestérone (10~7 M) was added (-© -) or not added (-W -) to. the culture média containing estradiol

, Après la confluence, les cellules ont été traitées pendant 23 h avec l'estradiol (10~8 M) seul (0) ou en association avec la progestérone à concentration croissante (10~10 M-10"6 M). L'incorporationdu sulfate a été mesurée dans le matériel cellulaire

, D--) a été calculée en soustrayant le sulfate incorporé dans les macromolécules cellulaires du sulfate cellulaire. La moyennei écart-type a été calculée à partir de trois déterminations pour chaque point sur trois cultures séparées, comme il est décrit dans Matériel et Méthodes. La quantité de sulfate disponible dans les cellules traitées par les hormones pendant 23 h, vol.39

, When the cells reached confiuency, they were treated for 23 hrs. by 10-8 M estradiol alone (0) or with progestérone al increasing concentrations (10-lo-10-6 ÎV-0-Sulfate incorporation was,measured in total cellular material (-A-) or in secreted (-© -) and cellular (-E-) macromolecules as described in, Dose-dependent effect of progestérone on sulfate incorporationin glandular epithelial cells, vol.23

, SOf~e st observé dans toutes les fractions étudiées Le. les lysats cellulaires, les macromolécules cellulaires et sécrétées et la QISD. L'effet maximal est observé pour les concentrations égales ou supérieuresà 10 _8 M de progestérone. Par rapport aux contrôles sans progestérone, cette hormone à la concentration de; 10~8 M, augmente de 2,9 et 4,5 fois l'incorporation du sulfate respectivement dans les lysats cellulaires et dans la C. R. Acad. Sci, pp.475-480, 1991.

, Effet comparé de la progestérone et du stéroïde antiprogestérone RU486 sur la quantité de sulfate disponible. Les cellules ont été traitées pendant 23 h avec l'estradiol (E2) (10"8 M) seul ou en association avec la progestérone, Effet comparé de la progestérone et des progestagènes sur la quantité de sulfate disponible. Les cellules sont traitées pendant 23 h avec l'estradiol (I0~8 M) en association avec la progestérone (10~8 M) (P) ou le 17 a-hydroxyprogestérone (10"s M) (170HP) ou l'acétate de médroxyprogestérone (10~8 M) (AMP) ou la dydrogestérone (10" 8 M), b

, 8 M progestérone (P) or 10"8 M 11 oi-hydroxyprogesterone (IIOHP) or 10"8 M médroxyprogestérone acétate (AMP) or 10" 8 M dydrogestérone. b. Compared effect of progestérone and steroid antiprogesterone RU4&6 on the available intracellular sulfate pool. Cells were treatedfor 23 hrs, Cells were treatedfor 23 hrs. by 10 "8 M estradiol with 10

. Qisd and . Ainsi, Nous avons voulu rechercher l'effet de la progestérone sur des cultures ayant un faible pourcentage de noyaux exprimant par immunomarquage des RPs. Nous avons donc analysé l'effet de l'hormone en fonction de sa concentration, en commençant l'incorporation du sulfate après 24 h d'action de l'hormone sur les cellules lorsque le pourcentage de cellules exprimant des RPs était inférieur à 11 %. La durée totale de l'incubation a été de 39 h dont les 15 dernières en présence du [35S]-S04~. La QISD est alors légèrement augmentée sous l'effet de la progestérone (1,5 fois par rapport aux cellules traitées avec E2 seul) (fig. 2). Cependant, la QISD ne varie pas en fonction de la concentration de progestérone utilisée. Ainsi l'effet-dose de cette hormone n'apparaît que lorsqu'il existe un pourcentage significatif de cellules exprimant des RPs. Ces résultats mettent en évidence l'importance, in vitro, de contrôler le pourcentage de cellules exprimant des RPs pour étudier l'action de la progestérone, l'effet le plus important de la progestérone se situe au niveau de la QISD et seule la QISD a été analysée dans la suite de cette étude. L'effet de la progestérone (10" 8 M) sur la QISD est totalement aboli par le stéroïde antiprogestérone, RU486(5.10" 7 M). L'acétate de médroxyprogestérone (10~8 M) et la dydrogestérone

R. M. Roberts, F. W. Bazer, J. Reprod, and . Fert, , vol.82, pp.875-892, 1988.

M. C. Thiard, M. Nicollier, A. Mahfoudi, G. L. Adessi, J. Reprod et al., , vol.87, pp.687-697, 1989.

M. C. Thiard, M. Nicollier, A. Mahfoudi, B. Cormery, and G. L. Adessi, Cell. Mol. Biol, vol.35, pp.199-205, 19896.

A. Mahfoudi, M. Nicollier, A. Y. Propper, S. Coumes-marquet, and G. L. Adessi, Biol. Cell, 1991.

G. Chaminadas, M. Alkhalaf, J. P. Remy-martin, A. Y. Propper, and G. L. Adessi, J. Endocrinol, vol.123, pp.233-241, 1989.

M. Perrot-applanat, F. Logeât, M. T. Groyer-picard, and E. Milgrom, Endocrinology, vol.116, pp.1473-1484, 1985.

G. Chaminadas, A. Y. Propper, M. Royez, O. Prost, J. P. Remy-martin et al.,

. Ferlil, , vol.11, pp.547-558, 1986.

A. Dutt, J. P. Tang, J. K. Welply, and D. D. Carson, Endocrinology, vol.118, pp.661-673, 1986.

O. H. Lowry, M. J. Rosebrough, A. L. Faar, and R. J. Randall, J. Biol. Chenu, pp.265-275, 1951.

B. J. Buirchell, R. Hahnel, J. Steroid, and . Biochenu, , vol.6, pp.1489-1494, 1975.

M. E. Hoadley, M. W. Seif, and J. D. Aplin, Biochem. J, vol.266, pp.757-763

K. Kubushiro, K. Kojima, M. Mltami, S. Mozawa, R. Ilsuka et al., Ardu Biochem. Biophys, vol.268, pp.129-136, 1989.